| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-20页 |
| 1.1 甜瓜叶枯病研究背景 | 第10-13页 |
| 1.1.1 甜瓜的生产概况 | 第10页 |
| 1.1.2 叶枯病发病症状及发病规律 | 第10-11页 |
| 1.1.3 叶枯病的防治研究进展 | 第11-13页 |
| 1.2 芽孢杆菌主要生物防治机理 | 第13-15页 |
| 1.2.1 竞争作用 | 第13-14页 |
| 1.2.2 拮抗作用 | 第14-15页 |
| 1.2.3 诱导植物抗性作用 | 第15页 |
| 1.2.4 促进植物生长 | 第15页 |
| 1.3 菌种诱变选育 | 第15-17页 |
| 1.3.1 物理诱变 | 第15-16页 |
| 1.3.1.1 紫外线 | 第15-16页 |
| 1.3.1.2 ~(60)Coγ-Ray | 第16页 |
| 1.3.1.3 快中子 | 第16页 |
| 1.3.2 化学诱变 | 第16-17页 |
| 1.3.3 生物诱变 | 第17页 |
| 1.4 生物有机肥研究概况 | 第17-19页 |
| 1.4.1 生物有机肥含义 | 第17-18页 |
| 1.4.2 生物有机肥的微生态效应和作用 | 第18页 |
| 1.4.3 生物有机肥应用现状及前景 | 第18-19页 |
| 1.5 课题的研究目的和意义 | 第19-20页 |
| 第二章 甜瓜土传叶枯病拮抗菌的分离与鉴定 | 第20-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第20页 |
| 2.1.1 土样来源 | 第20页 |
| 2.1.2 菌株 | 第20页 |
| 2.1.3 培养基 | 第20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-24页 |
| 2.2.1 菌株的分离和纯化 | 第20页 |
| 2.2.2 拮抗菌的筛选 | 第20-21页 |
| 2.2.3 拮抗菌的形态学特征观察 | 第21页 |
| 2.2.4 生理生化特征研究 | 第21-22页 |
| 2.2.5 拮抗菌对抗生素敏感性试验 | 第22页 |
| 2.2.6 拮抗菌的16S rRNA鉴定 | 第22页 |
| 2.2.7 生长曲线的测定 | 第22-23页 |
| 2.2.8 环境对拮抗菌生长影响的研究 | 第23页 |
| 2.2.9 拮抗菌抑菌谱的测定 | 第23-24页 |
| 2.3 结果与分析 | 第24-30页 |
| 2.3.1 分离和筛选结果 | 第24页 |
| 2.3.2 BS-17形态学特征 | 第24-25页 |
| 2.3.3 拮抗菌株BS-17的生理生化特征 | 第25页 |
| 2.3.4 拮抗菌BS-17对抗生素敏感性试验 | 第25-26页 |
| 2.3.5 16S rRNA序列分析 | 第26-27页 |
| 2.3.6 生长曲线的测定 | 第27页 |
| 2.3.7 环境对拮抗菌生长影响的研究 | 第27-29页 |
| 2.3.8 拮抗菌抑菌谱的测定 | 第29-30页 |
| 2.4 小结 | 第30-31页 |
| 第三章 拮抗物质产生条件及其拮抗机理初步研究 | 第31-45页 |
| 3.1 实验材料 | 第31页 |
| 3.1.1 供试菌株 | 第31页 |
| 3.1.2 培养基 | 第31页 |
| 3.2 试验方法 | 第31-35页 |
| 3.2.1 拮抗菌株挥发性代谢产物抑菌作用 | 第31页 |
| 3.2.2 拮抗菌株非挥发性代谢产物抑菌作用 | 第31-32页 |
| 3.2.3 拮抗物质存在的位置 | 第32页 |
| 3.2.4 拮抗物质产生条件 | 第32-33页 |
| 3.2.5 拮抗物质性质的研究 | 第33页 |
| 3.2.6 胞外分泌酶类的测定 | 第33-35页 |
| 3.2.7 拮抗物质对菌丝的影响 | 第35页 |
| 3.2.8 叶枯病病原菌胞外多糖(EPS)的测定 | 第35页 |
| 3.3 结果与分析 | 第35-43页 |
| 3.3.1 拮抗菌挥发性代谢产物的抑菌作用 | 第35-36页 |
| 3.3.2 拮抗菌非挥发性代谢产物的抑菌作用 | 第36页 |
| 3.3.3 拮抗物质产生位置的确定 | 第36-37页 |
| 3.3.4 拮抗物质产生条件的研究 | 第37-39页 |
| 3.3.5 拮抗物质性质的研究 | 第39-41页 |
| 3.3.6 胞外分泌酶类的检测 | 第41-42页 |
| 3.3.7 拮抗物质对菌丝的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.8 胞外多糖的测定 | 第43页 |
| 3.4 小结 | 第43-45页 |
| 第四章 拮抗菌的紫外-EMS复合诱变选育 | 第45-54页 |
| 4.1 实验材料 | 第45页 |
| 4.1.1 菌株 | 第45页 |
| 4.2 实验方法 | 第45-47页 |
| 4.2.1 菌悬液的制备 | 第45页 |
| 4.2.2 紫外诱变条件的确定 | 第45-46页 |
| 4.2.3 甲基磺酸乙酯(EMS)诱变 | 第46-47页 |
| 4.3 结果与分析 | 第47-53页 |
| 4.3.1 紫外诱变条件的确定 | 第47-48页 |
| 4.3.2 紫外诱变菌株的筛选 | 第48页 |
| 4.3.3 EMS诱变 | 第48-50页 |
| 4.3.4 EMS诱变条件的优化 | 第50-53页 |
| 4.3.5 EMS诱变菌株的筛选 | 第53页 |
| 4.4 小结 | 第53-54页 |
| 第五章 拮抗菌BS-1754生物有机肥的促生作用及防控效果研究 | 第54-65页 |
| 5.1 实验材料 | 第54页 |
| 5.1.1 供试材料 | 第54页 |
| 5.2 试验方法 | 第54-57页 |
| 5.2.1 BIO1754的促生作用 | 第54-56页 |
| 5.2.2 BIO1754生防效果 | 第56页 |
| 5.2.3 生物有机肥对土壤酶活性的影响 | 第56页 |
| 5.2.4 生物有机肥对植物叶片抗病性相关酶活性的影响 | 第56-57页 |
| 5.3 结果与分析 | 第57-64页 |
| 5.3.1 拮抗菌BS-175的促生作用 | 第57-59页 |
| 5.3.2 生物有机肥的防控效果 | 第59-60页 |
| 5.3.3 生物有机肥对土壤酶活性的影响 | 第60-62页 |
| 5.3.4 生物有机肥对植物叶片抗病性相关酶活性的影响 | 第62-64页 |
| 5.4 小结 | 第64-65页 |
| 全文总结 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-73页 |
| 攻读硕士学位期间取得的学术成果 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
