| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-28页 |
| 1.1 丹参有效成分 | 第15-16页 |
| 1.1.1 丹参酮IIA | 第15-16页 |
| 1.1.2 丹酚酸B | 第16页 |
| 1.2 丹参有效成分生物合成途径与调控 | 第16-23页 |
| 1.2.1 丹参酮合成途径研究进展 | 第16-20页 |
| 1.2.2 酚酸类成分合成途径与相关酶研究进展 | 第20-23页 |
| 1.3 诱导子的定义及种类 | 第23-26页 |
| 1.3.1 生物诱导子 | 第23-24页 |
| 1.3.2 非生物诱导子 | 第24-25页 |
| 1.3.3 诱导子的作用机制 | 第25-26页 |
| 1.4 SPX结构域的功能研究 | 第26页 |
| 1.4.1 SPX结构域的命名 | 第26页 |
| 1.4.2 含SPX结构域基因的研究 | 第26页 |
| 1.5 研究目的与意义 | 第26-28页 |
| 第二章 不同矿质元素对丹参次生代谢物积累的影响 | 第28-48页 |
| 2.1 引言 | 第28页 |
| 2.2 实验材料与试剂 | 第28-29页 |
| 2.2.1 材料 | 第28页 |
| 2.2.2 试剂 | 第28页 |
| 2.2.3 器材 | 第28页 |
| 2.2.4 主要仪器 | 第28-29页 |
| 2.3 实验方法 | 第29-32页 |
| 2.3.1 紫花丹参毛状根的获得 | 第29页 |
| 2.3.2 丹参毛状根的继代培养 | 第29-31页 |
| 2.3.3 丹参毛状根的诱导 | 第31-32页 |
| 2.3.4 诱导后丹参毛状根的采集 | 第32页 |
| 2.3.5 生长量的测定 | 第32页 |
| 2.3.6 丹参毛状根中有效成分的测定 | 第32页 |
| 2.3.7 数据分析 | 第32页 |
| 2.4 结果与分析 | 第32-47页 |
| 2.4.1 NiSO_4对丹参毛状根的诱导 | 第32-35页 |
| 2.4.2 Na_2SeO_3对丹参毛状根的诱导 | 第35-38页 |
| 2.4.3 Nd(NO_3)_3对丹参毛状根的诱导 | 第38-41页 |
| 2.4.4 Ce(NO_3)_3对丹参毛状根的诱导 | 第41-44页 |
| 2.4.5 大量元素磷对丹参毛状根的诱导 | 第44-47页 |
| 2.5 结论与讨论 | 第47-48页 |
| 第三章 Ce~(3+)对丹参酮类化合物合成代谢的动态影响 | 第48-57页 |
| 3.1 引言 | 第48页 |
| 3.2 实验材料与试剂 | 第48-49页 |
| 3.2.1 材料 | 第48页 |
| 3.2.2 试剂 | 第48页 |
| 3.2.3 器材 | 第48-49页 |
| 3.2.4 主要仪器 | 第49页 |
| 3.3 实验方法 | 第49-53页 |
| 3.3.1 紫花丹参毛状根的获得 | 第49页 |
| 3.3.2 丹参毛状根的继代培养 | 第49页 |
| 3.3.3 丹参毛状根的诱导 | 第49-50页 |
| 3.3.4 诱导后丹参毛状根的采集 | 第50页 |
| 3.3.5 生长量的测定 | 第50页 |
| 3.3.6 高效液相色谱法测定丹参毛状根中有效成分 | 第50页 |
| 3.3.7 丹参毛状根中总RNA的提取 | 第50页 |
| 3.3.8 反转录反应 | 第50-51页 |
| 3.3.9 荧光定量PCR反应体系 | 第51-52页 |
| 3.3.10 酶活性的测定 | 第52-53页 |
| 3.4 结果与分析 | 第53-56页 |
| 3.4.1 Ce~(3+)对丹参毛状根生长的动态影响 | 第53页 |
| 3.4.2 Ce~(3+)对丹参毛状根丹参酮类成分合成的动态影响 | 第53-54页 |
| 3.4.3 Ce~(3+)诱导对丹参酮类基因表达的影响 | 第54-56页 |
| 3.4.4 Ce~(3+)诱导对丹参保护酶活性的影响 | 第56页 |
| 3.5 结论与讨论 | 第56-57页 |
| 第四章 低磷诱导对丹参有效成分合成代谢的动态影响 | 第57-67页 |
| 4.1 引言 | 第57页 |
| 4.2 实验材料与试剂 | 第57页 |
| 4.2.1 材料 | 第57页 |
| 4.2.2 试剂 | 第57页 |
| 4.2.3 器材 | 第57页 |
| 4.2.4 主要仪器 | 第57页 |
| 4.3 实验方法 | 第57-60页 |
| 4.3.1 紫花丹参毛状根的获得 | 第57页 |
| 4.3.2 磷缺失条件下丹参毛状根的继代培养 | 第57-58页 |
| 4.3.3 诱导后丹参毛状根的采集 | 第58页 |
| 4.3.4 生长量的测定 | 第58页 |
| 4.3.5 丹参毛状根中有效成分的测定 | 第58页 |
| 4.3.6 丹参毛状根中总RNA的提取 | 第58页 |
| 4.3.7 反转录反应 | 第58页 |
| 4.3.8 荧光定量PCR反应 | 第58-59页 |
| 4.3.9 酶活性的测定 | 第59页 |
| 4.3.10 丹参毛状根中磷含量的测定 | 第59页 |
| 4.3.11 数据分析 | 第59-60页 |
| 4.4 结果与分析 | 第60-65页 |
| 4.4.1 低磷条件对丹参毛状根生长的影响 | 第60页 |
| 4.4.2 低磷条件对丹参毛状根酚酸类成分合成的影响 | 第60-61页 |
| 4.4.3 低磷条件对丹参毛状根丹参酮类成分合成的影响 | 第61-62页 |
| 4.4.4 丹参中丹酚酸类成分代谢途径中基因的表达 | 第62-64页 |
| 4.4.5 丹参中丹参酮类成分代谢途径中基因的表达 | 第64页 |
| 4.4.6 低磷条件对丹参保护酶活性的动态影响 | 第64-65页 |
| 4.4.7 低磷条件对丹参毛状根中磷含量积累的影响 | 第65页 |
| 4.5 结论与讨论 | 第65-67页 |
| 第五章 低磷诱导对基因SPX影响及生物信息学分析 | 第67-79页 |
| 5.1 引言 | 第67页 |
| 5.2 实验材料与试剂 | 第67页 |
| 5.2.1 材料 | 第67页 |
| 5.2.2 试剂 | 第67页 |
| 5.2.3 器材 | 第67页 |
| 5.2.4 仪器 | 第67页 |
| 5.3 实验方法 | 第67-68页 |
| 5.3.1 紫花丹参毛状根的获得 | 第67页 |
| 5.3.2 磷缺失条件下丹参毛状根的继代培养 | 第67页 |
| 5.3.3 诱导后丹参毛状根的采集 | 第67-68页 |
| 5.3.4 丹参毛状根中总RNA的提取 | 第68页 |
| 5.3.5 反转录反应 | 第68页 |
| 5.3.6 荧光定量PCR反应 | 第68页 |
| 5.3.7 生物信息学分析 | 第68页 |
| 5.4 结果与分析 | 第68-78页 |
| 5.4.1 低磷条件对基因SPX表达的影响 | 第68-69页 |
| 5.4.2 基因SPX一级结构预测 | 第69-74页 |
| 5.4.3 基因SPX二级结构预测 | 第74-76页 |
| 5.4.4 丹参SPX氨基酸序列的分子系统进化分析 | 第76-78页 |
| 5.5 结论与讨论 | 第78-79页 |
| 第六章 结论 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-86页 |
| 致谢 | 第86页 |
