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古日古木-7有效部位的制备、保肝活性、定量分析及锁阳产品的研制

摘要第5-8页
ABSTRACT第8-10页
符号说明第11-17页
第一章 古日古木-7综述第17-26页
    1.1 蒙药概述第17页
    1.2 古日古木-7的研究概况第17-25页
        1.2.1 红花的研究概况第17-22页
            1.2.1.1 红花的化学成分第18-20页
            1.2.1.2 红花的药理作用第20-22页
                1.2.1.2.1 对心脑血管的作用第20-21页
                1.2.1.2.2 对免疫系统的作用第21页
                1.2.1.2.3 对神经系统的作用第21页
                1.2.1.2.4 抗氧化的作用第21页
                1.2.1.2.5 对肝脏的作用第21-22页
        1.2.2 诃子的研究概况第22-23页
            1.2.2.1 诃子的化学成分第22页
            1.2.2.2 诃子的生理活性第22-23页
        1.2.3 古日古木-7的其他组分第23-25页
    1.3 研究目的和意义第25-26页
第二章 古日古木-7有效部位的制备、筛选及抗氧化活性的测定第26-30页
    2.1 实验材料第26-27页
        2.1.1 药材第26页
        2.1.2 试剂第26页
        2.1.3 仪器第26页
        2.1.4 实验动物第26-27页
    2.2 实验方法第27-28页
        2.2.1 古日古木-7的提取第27页
        2.2.2 古日古木-7有效部位的分离第27页
        2.2.3 有效部位的筛选第27页
        2.2.4 抗氧化活性的测定第27-28页
    2.3 结果与分析第28-30页
        2.3.1 有效部位的确定第28-29页
        2.3.2 古日古木-7与MF的抗氧化活性第29-30页
第三章 MF对四氯化碳诱导小鼠急性肝损伤的保护作用第30-42页
    3.1 实验材料第30-31页
        3.1.1 实验药材第30页
        3.1.2 实验动物第30页
        3.1.3 实验试剂第30页
        3.1.4 实验仪器第30-31页
    3.2 实验方法第31-35页
        3.2.1 古日古木-7药物粉末的制备第31页
        3.2.2 10%中性缓冲福尔马林溶液的配制第31页
        3.2.3 小鼠给药及造模第31-32页
        3.2.4 小鼠血清转氨酶的测定第32页
        3.2.5 小鼠肝脏组织中超氧化物歧化酶(SOD)的测定第32页
        3.2.6 小鼠肝脏组织中丙二醛(MDA)的测定第32-33页
        3.2.7 肝脏组织的病理切片第33页
        3.2.8 血清中的四种胆汁酸的含量测定第33-35页
            3.2.8.1 小鼠血清样品的制取第33页
            3.2.8.2 小鼠血清中的四种牛磺酸结合型胆汁酸的确定第33页
            3.2.8.3 色谱条件第33-34页
            3.2.8.4 质谱条件第34-35页
    3.3 结果与分析第35-42页
        3.3.1 古日古木-7粉末与MF对血清中ALT和AST的作用第35-36页
        3.3.2 MF对肝脏组织中SOD的作用第36-37页
        3.3.3 MF对肝脏组织中MDA的作用第37-38页
        3.3.4 MF改善肝脏组织的病理变化第38-39页
        3.3.5 MF对小鼠血清中的4种牛磺酸结合型胆汁酸的影响第39-42页
第四章 定量分析MF中的化学成分第42-56页
    4.1 实验仪器和试剂第42页
        4.1.1 仪器第42页
        4.1.2 试剂第42页
    4.2 实验方法第42-44页
        4.2.1 UPLC-MS样品溶液的制备第42-43页
        4.2.2 UPLC-MS分析方法第43页
        4.2.3 原花青素A2相当量的检测定量方法第43-44页
    4.3 结果与分析第44-56页
        4.3.1 MF中原花青素A2相当量第44-45页
        4.3.2 MF中的化合物第45-51页
        4.3.3 MF中化合物的含量第51-56页
第五章 锁阳综述第56-60页
    5.1 锁阳概述第56页
    5.2 锁阳研究概况第56-59页
        5.2.1 锁阳化学成分的研究概况第56-58页
        5.2.2 锁阳药理活性研究概况第58-59页
            5.2.2.1 锁阳抗氧化作用第58页
            5.2.2.2 锁阳抗糖尿病作用第58页
            5.2.2.3 锁阳增强免疫功能的作用第58页
            5.2.2.4 锁阳的其他作用第58-59页
    5.3 本课题研究目的和意义第59-60页
第六章 锁阳三萜咀嚼片的工艺研究第60-69页
    6.1 实验材料第60页
        6.1.1 材料第60页
        6.1.2 试剂第60页
    6.2 实验方法第60-62页
        6.2.1 原料的制备第60-61页
        6.2.2 工艺流程第61页
            6.2.2.1 制软材第61页
            6.2.2.2 制粒、烘干第61页
            6.2.2.3 整粒、压片第61页
        6.2.3 分析检测第61-62页
            6.2.3.1 样品制备第62页
            6.2.3.2 UPLC-MS条件参数第62页
    6.3 结果与分析第62-69页
        6.3.1 乙醇提取条件第62-64页
            6.3.1.1 提取时间及温度的确定第63页
            6.3.1.2 乙醇浓度的确定第63-64页
        6.3.2 乙醇提取物的分析检测第64-65页
        6.3.3 辅料的确定第65-67页
            6.3.3.1 粘合剂的确定第65页
            6.3.3.2 咀嚼片配方第65-66页
            6.3.3.3 聚乙烯基吡咯烷酮的确定第66-67页
        6.3.4 UPLC-MS检测锁阳三萜咀嚼片中的三萜成分及其含量第67-69页
第七章 两种锁阳膳食纤维的制备及其物理性质第69-76页
    7.1 实验材料第69页
        7.1.1 材料第69页
        7.1.2 试剂与仪器第69页
    7.2 实验方法第69-71页
        7.2.1 工艺流程第69页
        7.2.2 60℃下浸泡提取第69-70页
            7.2.2.1 半胱氨酸酸溶液提取第70页
            7.2.2.2 UPLC-MS条件参数第70页
            7.2.2.3 纯水提取第70页
        7.2.3 物理性质的测定第70-71页
            7.2.3.1 持水性的测定第71页
            7.2.3.2 溶胀性的测定第71页
    7.3 结果与分析第71-76页
        7.3.1 半胱氨酸酸溶液处理条件的确定第71-74页
            7.3.1.1 温度的确定第72-73页
            7.3.1.2 pH的确定第73页
            7.3.1.3 反应时间的确定第73-74页
        7.3.2 不同溶液处理对锁阳残渣的影响第74-75页
        7.3.3 两种锁阳膳食纤维的物理性质第75-76页
            7.3.3.1 持水性第75页
            7.3.3.2 溶胀性第75-76页
第八章 结论第76-77页
参考文献第77-89页
致谢第89-90页
在读期间所获学术成果第90页

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