符号说明 | 第1-9页 |
中文摘要 | 第9-11页 |
英文摘要 | 第11-14页 |
1 文献综述 | 第14-25页 |
2 材料与方法 | 第25-35页 |
·实验材料 | 第25-26页 |
·实验动物 | 第25页 |
·主要试剂与药品 | 第25页 |
·主要仪器设备 | 第25-26页 |
·试剂的配制 | 第26页 |
·实验方法 | 第26-35页 |
·实验设计 | 第26-27页 |
·小鼠骨髓来源EPCs的分离培养 | 第27页 |
·DiI-ac-LDL摄取试验和FITC-UEA-1 结合试验 | 第27页 |
·流式细胞术检测EPCs表面标志 | 第27-28页 |
·EPCs表面标志免疫荧光染色 | 第28页 |
·EPCs粘附功能检测 | 第28页 |
·EPCs增殖功能检测 | 第28页 |
·EPCs体外成血管功能检测 | 第28页 |
·EPCs迁移功能检测 | 第28页 |
·小鼠血浆TC含量测定 | 第28-29页 |
·小鼠血浆TG含量测定 | 第29页 |
·小鼠血浆VEGF、SDF-1α和TNF-α含量测定 | 第29-30页 |
·小鼠血浆和细胞培养基NO含量测定 | 第30页 |
·小鼠动脉壁ICAM-1、VCAM-1、Sca-1 和c-kit免疫荧光染色 | 第30-31页 |
·细胞总蛋白提取 | 第31页 |
·BCA蛋白定量 | 第31-32页 |
·western-blot检测蛋白表达 | 第32-34页 |
·统计方法 | 第34-35页 |
3 结果与分析 | 第35-54页 |
·小鼠骨髓MNCs诱导分化为EPCs | 第35-38页 |
·差速贴壁分离小鼠骨髓来源EPCs形态 | 第35-36页 |
·差速贴壁分离不同EPCs亚群表面标志鉴定 | 第36页 |
·差速贴壁分离不同EPCs亚群粘附功能和成血管功能 | 第36-37页 |
·差速贴壁分离不同EPCs亚群eNOS和VEGF表达检测 | 第37-38页 |
·apo AⅠ模拟肽reverse D-4F提高小鼠骨髓来源EPCs功能及其机制 | 第38-44页 |
·C57小鼠骨髓来源EPCs分离与鉴定 | 第38-39页 |
·reverse D-4F提高EPCs功能 | 第39-40页 |
·PI3K抑制剂(LY294002)和 一氧化氮合酶抑制剂(L-NAME)部分抑制reverseD-4F诱导的EPCs生物功能的提高 | 第40-42页 |
·LY294002和L-NAME抑制reverse D-4F诱导EPCs中AKT和eNOS的激活 | 第42-44页 |
·reverse D-4F提高高脂饮食PI3K/AKT/eNOS小鼠EPCs的数量和功能 | 第44-51页 |
·reverse D-4F对高脂饮食小鼠血浆TC、TG、NO、VEGF、SDF-1α 和TNF-α的影响 | 第44-45页 |
·reverse D-4F对高脂饮食小鼠体内EPCs数量的影响 | 第45-46页 |
·reverse D-4F对高脂饮食小鼠体内EPCs功能的影响 | 第46-48页 |
·reverse D-4F对高脂饮食小鼠体内其他细胞亚群的影响 | 第48页 |
·reverse D-4F对高脂饮食小鼠动脉壁ICAM-1 和VCAM-1 的影响 | 第48-49页 |
·小鼠血浆SDF-1 和TNF-α水平与EPCs数量相关性分析 | 第49-51页 |
·reverse D-4F通过激活PI3K/AKT/eNOS保护TNF-α诱导的EPCs损伤 | 第51-54页 |
·reverse D-4F抑制TNF-α诱导的EPCs功能损伤 | 第51-52页 |
·LY294002抑制reverse D-4F对TNF-α诱导EPCs功能损伤的修复 | 第52页 |
·TNF-α抑制EPCs中AKT和eNOS的激活 | 第52-53页 |
·reverse D-4F通过AKT/eNOS信号通路恢复EPCs中AKT和eNOS的激活 | 第53-54页 |
4 讨论 | 第54-62页 |
·获得小鼠骨髓EPCs诱导分化培养的最佳贴壁时间 | 第54-56页 |
·apo AⅠ模拟肽reverse D-4F通过AKT/e NOS信号通路提高小鼠骨髓来源EPCs的功能 | 第56-58页 |
·apo AⅠ模拟肽reverse D-4F改善高脂饮食小鼠EPCs的数量和功能 | 第58-62页 |
5 结论 | 第62-63页 |
6 参考文献 | 第63-78页 |
7 附录 | 第78-79页 |
8 致谢 | 第79-80页 |
9 攻读学位期间发表论文情况 | 第80页 |