摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-12页 |
第一章 绪论 | 第12-26页 |
·中药治疗糖尿病机制的研究进展 | 第12-16页 |
·改善胰岛素抵抗,增加胰岛素敏感性 | 第12-14页 |
·保护胰岛β细胞,促进胰岛素分泌 | 第14-15页 |
·影响糖代谢的某些环节 | 第15-16页 |
·桑叶降糖有效部位 | 第16-18页 |
·多糖类物质 | 第17页 |
·黄酮类物质 | 第17-18页 |
·生物碱类物质 | 第18页 |
·桑叶有效部位降血糖机制的研究现状 | 第18-20页 |
·桑叶多糖治疗糖尿病的作用机制 | 第18-19页 |
·桑叶黄酮治疗糖尿病的作用机制 | 第19页 |
·桑叶生物碱治疗糖尿病的作用机制 | 第19-20页 |
·AMPK 改善胰岛素抵抗的机制 | 第20-23页 |
·调节糖代谢 | 第20-21页 |
·增加 GLUT4 的转位 | 第21页 |
·增加脂肪酸氧化,减少脂类的合成 | 第21-22页 |
·介导细胞脂肪因子 | 第22-23页 |
·本课题的研究内容及意义 | 第23-26页 |
·研究内容 | 第23-24页 |
·研究路线 | 第24-25页 |
·研究意义 | 第25-26页 |
第二章 HepG2 细胞胰岛素抵抗模型的建立及稳定性研究 | 第26-33页 |
·实验材料和仪器 | 第26-27页 |
·实验材料 | 第26-27页 |
·实验仪器 | 第27页 |
·实验方法 | 第27-29页 |
·HepG2 细胞培养 | 第27页 |
·胰岛素溶液的配制 | 第27页 |
·胰岛素对细胞增殖的影响(MTT) | 第27-28页 |
·HepG2 细胞胰岛素抵抗模型的建立 | 第28-29页 |
·HepG2 胰岛素抵抗细胞模型持续时间的研究 | 第29页 |
·结果与讨论 | 第29-32页 |
·胰岛素对细胞增殖的影响 | 第29-30页 |
·不同胰岛素浓度和胰岛素作用时间对 HepG2 细胞胰岛素抵抗的影响 | 第30-31页 |
·HepG2 细胞胰岛素抵抗稳定时间的研究 | 第31-32页 |
·讨论 | 第32页 |
·本章小结 | 第32-33页 |
第三章 桑叶有效部位对 IR-HepG2 细胞葡萄糖吸收的影响及分子机制探讨 | 第33-45页 |
·实验材料和仪器 | 第33-35页 |
·实验材料 | 第34-35页 |
·实验仪器 | 第35页 |
·实验方法 | 第35-37页 |
·桑叶有效部位对细胞增殖的影响 | 第35页 |
·IR-HepG2 及非 IR-HepG2 细胞葡萄糖消耗量的检测 | 第35-36页 |
·Western blotting 主要试剂的配制 | 第36页 |
·Western blotting 法检测相关蛋白表达及磷酸化水平 | 第36页 |
·统计学处理 | 第36-37页 |
·结果和讨论 | 第37-43页 |
·桑叶有效部位对细胞增殖的影响 | 第37-39页 |
·桑叶有效部位对 IR-HepG2 及 IR-HepG2 细胞葡萄糖消耗量的影响 | 第39-40页 |
·桑叶有效部位对 IR-HepG2 细胞 AMPKα蛋白磷酸化水平的影响 | 第40-41页 |
·桑叶有效部位对 IR-HepG2 细胞 AKT 蛋白磷酸化水平的影响 | 第41-43页 |
·讨论 | 第43页 |
·本章小结 | 第43-45页 |
第四章 桑叶有效部位对 IR-HepG2 细胞糖代谢的影响 | 第45-53页 |
·实验材料与仪器 | 第46-47页 |
·实验材料 | 第46页 |
·实验仪器 | 第46-47页 |
·实验方法 | 第47-49页 |
·蒽酮-硫酸法测多糖标曲 | 第47页 |
·BCA 法测蛋白标曲 | 第47页 |
·IR-HepG2 细胞糖原合成量的检测 | 第47页 |
·桑叶有效部位对 IR-HepG2 细胞 HK、PK 的影响 | 第47-49页 |
·数据处理 | 第49页 |
·结果和讨论 | 第49-52页 |
·多糖标准曲线 | 第49-50页 |
·蛋白标准曲线 | 第50页 |
·桑叶有效部位对 IR-HepG2 细胞肝糖代谢的影响 | 第50-51页 |
·讨论 | 第51-52页 |
·本章小结 | 第52-53页 |
总结与展望 | 第53-54页 |
1 结论 | 第53页 |
2 创新点 | 第53页 |
3 展望 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-61页 |
攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第61-62页 |
致谢 | 第62-63页 |
附件 | 第63页 |