摘要 | 第1-4页 |
Abstract | 第4-9页 |
主要符号对照表 | 第9-11页 |
第1章 引言 | 第11-23页 |
·线粒体及其功能 | 第11-18页 |
·线粒体概述 | 第11页 |
·线粒体与能量代谢 | 第11-13页 |
·线粒体和细胞凋亡 | 第13-14页 |
·线粒体与钙信号 | 第14-15页 |
·线粒体融合与分裂 | 第15页 |
·线粒体的容量及其功能 | 第15-16页 |
·线粒体与细胞周期,细胞信号 | 第16-17页 |
·线粒体与类固醇激素合成 | 第17-18页 |
·类固醇激素合成的调控 | 第18-20页 |
·下丘脑-垂体-性腺轴(HPG 轴) | 第18-19页 |
·Leptin 对 HPG 轴的调控 | 第19页 |
·类固醇激素合成调控的分子机制 | 第19-20页 |
·天然无折叠蛋白概述 | 第20-21页 |
·天然无折叠蛋白的结构 | 第20页 |
·天然无折叠蛋白的功能 | 第20-21页 |
·MGARP 研究进展 | 第21-22页 |
·MGARP 的命名 | 第21页 |
·MGARP 研究进展 | 第21-22页 |
·论文的目的和意义 | 第22-23页 |
第2章 实验材料和方法 | 第23-33页 |
·实验材料 | 第23页 |
·菌种、细胞 | 第23页 |
·实验动物 | 第23页 |
·实验试剂 | 第23页 |
·雌性小鼠动情周期检测 | 第23-24页 |
·免疫组织化学染色 | 第24-25页 |
·SDS-PAGE 和免疫印迹实验(Western blot) | 第25-26页 |
·SDS-PAGE 和 Western blot 实验试剂 | 第25-26页 |
·SDS-PAGE 和 Western blot 实验步骤 | 第26页 |
·小鼠大脑组织冰冻切片及免疫荧光染色 | 第26-27页 |
·小鼠卵巢摘除模型的建立和雌激素干预 | 第27-28页 |
·GnRH 拮抗剂干预实验 | 第28页 |
·Leptin 干预实验 | 第28页 |
·RNA 干扰载体构建 | 第28-29页 |
·细胞培养与细胞转染 | 第29-30页 |
·细胞培养 | 第29-30页 |
·细胞转染 | 第30页 |
·稳定株的筛选 | 第30页 |
·MTT 实验 | 第30-31页 |
·MTT 实验试剂 | 第30-31页 |
·MTT 实验步骤 | 第31页 |
·激光共聚焦显微镜 | 第31页 |
·流式细胞分析仪 | 第31-32页 |
·线粒体膜电位 | 第31页 |
·细胞周期 | 第31-32页 |
·透射电子显微镜样品处理 | 第32页 |
·数据计算与统计分析 | 第32-33页 |
第3章 MGARP 的表达调控 | 第33-43页 |
·本章引论 | 第33页 |
·结果与讨论 | 第33-41页 |
·MGARP 在小鼠发育中的表达水平变化 | 第33-34页 |
·雌性小鼠动情周期对 MGARP 表达的影响 | 第34-36页 |
·雌激素对 MGARP 表达的影响 | 第36-37页 |
·促性腺激素释放激素拮抗剂对 MGARP 表达的影响 | 第37-39页 |
·Leptin 对 MGARP 表达的影响 | 第39-41页 |
·小结 | 第41-43页 |
第4章 MGARP 的功能研究 | 第43-48页 |
·本章引论 | 第43页 |
·结果与讨论 | 第43-47页 |
·MGARP 表达降低稳定株的筛选 | 第43-44页 |
·MGARP 表达降低导致细胞增殖能力降低 | 第44页 |
·MGARP 表达降低影响细胞周期 | 第44-45页 |
·MGARP 表达降低造成线粒体肿胀 | 第45-46页 |
·MGARP 表达降低导致线粒体膜电位降低 | 第46-47页 |
·小结 | 第47-48页 |
第5章 结论 | 第48-49页 |
第6章 其它工作 | 第49-57页 |
·本章引论 | 第49页 |
·结果与讨论 | 第49-56页 |
·MGARP 表达降低慢病毒载体的构建与效果检测 | 第49-50页 |
·MGARP 转基因小鼠的检测 | 第50-54页 |
·小鼠大脑中的 MGARP 表达 | 第54-56页 |
·小结 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-66页 |
致谢 | 第66-67页 |
个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第67页 |