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在坏死中MLKL复合体组装和执行功能的过程

摘要第4-5页
Abstract第5页
第一章 前言第12-22页
    1.1 细胞程序性死亡第12-16页
        1.1.1 细胞凋亡的研究状况第13-14页
        1.1.2 细胞凋亡的途径第14-16页
    1.2 细胞坏死第16-20页
        1.2.1 细胞程序性坏死与坏死小体第16-17页
        1.2.2 RIP3在细胞坏死中的作用第17-18页
        1.2.3 细胞坏死的生理病理功能第18-19页
        1.2.4 细胞程序性坏死的分子机制第19-20页
        1.2.5 MLKL在细胞坏死中的作用第20页
    1.3 立题背景第20-22页
第二章 材料与方法第22-40页
    2.1 实验相关仪器和试剂第22-24页
        2.1.1 实验试剂第22-23页
        2.1.2 实验仪器第23-24页
    2.2 克隆实验相关方法第24-31页
        2.2.1 质粒载体第24页
        2.2.2 大肠杆菌的感受态细胞制备流程第24-26页
        2.2.3 质粒DNA的提取第26-27页
        2.2.4 质粒的限制性酶切检测第27页
        2.2.5 PCR反应体系第27页
        2.2.6 DNA的回收第27-29页
        2.2.7 DNA的纯化第29页
        2.2.8 质粒载体的构建第29-31页
    2.3 细胞相关实验和方法第31-34页
        2.3.1 细胞培养第31-33页
        2.3.2 稳转细胞珠的筛选第33-34页
        2.3.3 慢病毒包装与感染第34页
    2.4 蛋白质相关实验和方法第34-38页
        2.4.1 蛋白复合体的体外交联第34-35页
        2.4.2 免疫印迹第35-37页
        2.4.3 免疫共沉淀第37-38页
    2.5 荧光共聚焦显微镜相关第38-40页
第三章 结果与讨论第40-62页
    3.1 细胞程序性坏死过程中MLKL会形成八聚体聚体第40-46页
        3.1.1 在TNF介导的细胞坏死中MLKL形成八聚体第40-42页
        3.1.2 MLKL所形成的的八聚体是最大的聚体第42-46页
    3.2 TNF介导的坏死依赖MLKL八聚体的形成第46-50页
        3.2.1 MLKL中的S79,D106影响MLKL八聚体的组装第46-48页
        3.2.2 MLKL中的T122对于MLKL八聚体的组装有重要作用第48-50页
    3.3 MLKL的R30,R34影响八聚体整合到细胞膜第50-54页
        3.3.1 MLKL中的R30与R34对MLKL八聚体整合细胞膜有重要影响第50-51页
        3.3.2 R30和R34对MLKL结合细胞质膜十分重要第51-54页
    3.4 MLKL八聚体在细胞膜上第54-60页
        3.4.1 MLKL八聚体会透过细胞膜第54-58页
        3.4.2 MLKL八聚体的N端与C端不会穿过细胞膜第58-60页
    3.5 结果与讨论第60-62页
附录1 图表索引第62-63页
附录2 缩略语及中英文对照第63-65页
参考文献第65-72页
致谢第72页

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