| 中文摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 缩略词表 | 第7-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-32页 |
| 1.1 植物细胞发育及其调控研究进展 | 第12-17页 |
| 1.1.1 植物叶表皮扁平细胞发育过程 | 第12-13页 |
| 1.1.2 植物细胞形态发生的调控机理 | 第13-17页 |
| 1.2 微管在植物细胞形态建成中的作用研究进展 | 第17-26页 |
| 1.2.1 微管突变体的研究 | 第17-19页 |
| 1.2.2 微管与纤维素在细胞扩展中的双向相互作用 | 第19-22页 |
| 1.2.3 微管骨架对植物细胞形态建成的影响 | 第22-23页 |
| 1.2.4 微管骨架对植物细胞周期的影响 | 第23-26页 |
| 1.3 生长素对植物细胞形态建成的研究进展 | 第26-28页 |
| 1.3.1 生长素的生理功能 | 第26页 |
| 1.3.2 生长素对器官发生和细胞形态建成的影响 | 第26-28页 |
| 1.4 拟南芥R基因家族的研究进展 | 第28-30页 |
| 1.4.1 R基因的结构及分类 | 第28-29页 |
| 1.4.2 TIR类蛋白功能 | 第29页 |
| 1.4.3 激素对植物抗病性的影响 | 第29-30页 |
| 1.5 本论文的研究意义 | 第30-32页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第32-41页 |
| 2.1 实验材料及试剂 | 第32-33页 |
| 2.2 实验方法 | 第33-41页 |
| 2.2.1 植物材料的培养 | 第33-34页 |
| 2.2.2 牙齿树脂合成印迹技术筛选突变体 | 第34页 |
| 2.2.3 GFP标记的ecs1突变体筛选 | 第34页 |
| 2.2.4 ecs1突变体的向地性实验 | 第34页 |
| 2.2.5 FM4-64染色 | 第34-35页 |
| 2.2.6 拟南芥叶组织半薄切片制作方法 | 第35页 |
| 2.2.7 叶绿素含量测定 | 第35页 |
| 2.2.8 纤维素含量测定 | 第35-36页 |
| 2.2.9 显微镜术 | 第36页 |
| 2.2.10 流式细胞仪分析 | 第36-37页 |
| 2.2.11 荧光原位杂交 | 第37页 |
| 2.2.12 ecs1突变基因图位克隆 | 第37-38页 |
| 2.2.13 ecs1突变体中微管细胞骨架观察 | 第38页 |
| 2.2.14 微管相互作用药物处理ecs1及tub4等位突变体 | 第38页 |
| 2.2.15 tao1等位基因的T-DNA插入突变体鉴定 | 第38页 |
| 2.2.16 总RNA提取及Real-timePCR定量分析 | 第38-39页 |
| 2.2.17 构建TAO1表达载体 | 第39页 |
| 2.2.18 转基因植株GUS组化试验 | 第39页 |
| 2.2.19 TAO1-GFP蛋白的亚细胞定位 | 第39页 |
| 2.2.20 外源激素NAA和乙烯处理转基因植株 | 第39-40页 |
| 2.2.21 气相色谱测定植物内源乙烯含量 | 第40-41页 |
| 第三章 TUB4对拟南芥生长和发育的影响 | 第41-70页 |
| 3.1 结果与分析 | 第41-64页 |
| 3.1.1 ecs1植株表型 | 第41-43页 |
| 3.1.2 ecs1叶表皮扁平细胞和叶肉细胞变大 | 第43-46页 |
| 3.1.3 ecs1突变基因的图位克隆 | 第46-47页 |
| 3.1.4 ecs1细胞核内复制增强 | 第47-51页 |
| 3.1.5 ecs1中细胞周期关键基因表达水平下降 | 第51-52页 |
| 3.1.6 TUB4突变影响ecs1表皮细胞微管排列 | 第52-53页 |
| 3.1.7 ecs1根细胞各向异性扩展受抑制 | 第53-56页 |
| 3.1.8 tub4的等位突变体表型分析 | 第56-58页 |
| 3.1.9 ecs1根对微管相互作用药物超敏感 | 第58页 |
| 3.1.10 ecs1突变体根的向地性反应减弱 | 第58-59页 |
| 3.1.11 ecs1根尖生长素积累减少,而NAA和NPA处理可以恢复生长素的积累 | 第59-60页 |
| 3.1.12 TUB4突变影响PIN1和PIN2蛋白在根中的极性分布 | 第60-62页 |
| 3.1.13 TUB4突变影响根的囊泡运输,且对BFA不敏感 | 第62-64页 |
| 3.2 讨论 | 第64-70页 |
| 3.2.1 TUB4对表皮细胞形态建成的影响 | 第65-68页 |
| 3.2.2 TUB4对根发育的影响 | 第68-70页 |
| 第四章 TAO1基因新功能分析 | 第70-81页 |
| 4.1 结果与分析 | 第70-78页 |
| 4.1.1 tao1T-DNA插入的等位突变体的鉴定及表型 | 第70-72页 |
| 4.1.2 TAO1表达模式 | 第72-74页 |
| 4.1.3 植物激素生长素和乙烯调节TAO1的转录 | 第74-76页 |
| 4.1.4 TAO1蛋白的亚细胞定位 | 第76-77页 |
| 4.1.5 TAO1 OX超表达植株中内源乙烯测量及乙烯响应基因表达分析 | 第77-78页 |
| 4.2 讨论 | 第78-81页 |
| 参考文献 | 第81-95页 |
| 在学期间的研究成果 | 第95-96页 |
| 致谢 | 第96页 |
