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人参皂苷酶Ⅰ型酶廉价发酵制备的方法及C-K结晶的研究

摘要第4-5页
Abstract第5页
第一章 绪论第8-23页
    1.1 人参第8-11页
        1.1.1 人参的植物形态第8-9页
        1.1.2 人参属植物的分布第9页
        1.1.3 人参的化学成分第9-10页
        1.1.4 人参的药理作用第10页
        1.1.5 人参研究的展望第10-11页
    1.2 人参皂苷第11-17页
        1.2.1 人参皂苷的结构第11-14页
        1.2.2 人参皂苷的性质第14-15页
        1.2.3 人参皂苷的药理作用第15-16页
        1.2.4 人参皂苷C-K第16-17页
    1.3 人参皂苷C-K的生物转化第17-19页
        1.3.1 酶转化法第17-18页
        1.3.2 微生物发酵法第18-19页
    1.4 人参皂苷的分离纯化及分析方法第19-21页
        1.4.1 人参皂苷单体的分离第19-20页
        1.4.2 人参皂苷的分析方法第20页
            1.4.2.1 薄层层析法第20页
            1.4.2.2 高效液相色谱法第20页
        1.4.3 人参皂苷的光谱特征和结构鉴定第20-21页
    1.5 本论文主要研究内容与意义第21-23页
第二章 材料与方法第23-28页
    2.1 实验材料第23页
    2.2 实验方法第23-28页
        2.2.1 微生物培养产酶第23-24页
            2.2.1.1 微生物培养第23-24页
            2.2.1.2 微生物酶液提取第24页
        2.2.2 微生物酶反应第24页
        2.2.3 生物转化法制备人参皂苷C-K第24页
        2.2.4 人参皂苷C-K的分离纯化第24-26页
            2.2.4.1 AB-8大孔吸附树脂脱糖第24-25页
            2.2.4.2 D-296离子交换树脂脱色第25页
            2.2.4.3 硅胶柱分离第25-26页
            2.2.4.4 结晶第26页
        2.2.5 高效液相色谱检测产品纯度第26-27页
        2.2.6 核磁共振测定产品结构第27-28页
第三章 结果与讨论第28-46页
    3.1 产人参皂苷酶Ⅰ型酶菌种及诱导物的选择第28-29页
    3.2 最适酶反应条件的确定第29-31页
        3.2.1 酶反应底物浓度确定第29-30页
        3.2.2 最佳反应温度的确定第30-31页
    3.3 生物转化法制备人参皂苷C-K第31-32页
    3.4 人参皂苷C-K的分离纯化第32-40页
        3.4.1 AB-8大孔吸附树脂脱糖第32页
        3.4.2 D-296离子交换树脂脱色第32-33页
        3.4.3 硅胶柱分离第33-39页
        3.4.4 结晶第39-40页
    3.5 人参皂苷C-K的结构表征第40-46页
        3.5.1 一维~1H核磁共振谱(~1H NMR)第40-43页
        3.5.2 一维~(13)C核磁共振谱(~(13)C NMR)第43-46页
第四章 结论第46-47页
参考文献第47-50页
致谢第50页

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