| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第一章 绪论 | 第8-23页 |
| 1.1 人参 | 第8-11页 |
| 1.1.1 人参的植物形态 | 第8-9页 |
| 1.1.2 人参属植物的分布 | 第9页 |
| 1.1.3 人参的化学成分 | 第9-10页 |
| 1.1.4 人参的药理作用 | 第10页 |
| 1.1.5 人参研究的展望 | 第10-11页 |
| 1.2 人参皂苷 | 第11-17页 |
| 1.2.1 人参皂苷的结构 | 第11-14页 |
| 1.2.2 人参皂苷的性质 | 第14-15页 |
| 1.2.3 人参皂苷的药理作用 | 第15-16页 |
| 1.2.4 人参皂苷C-K | 第16-17页 |
| 1.3 人参皂苷C-K的生物转化 | 第17-19页 |
| 1.3.1 酶转化法 | 第17-18页 |
| 1.3.2 微生物发酵法 | 第18-19页 |
| 1.4 人参皂苷的分离纯化及分析方法 | 第19-21页 |
| 1.4.1 人参皂苷单体的分离 | 第19-20页 |
| 1.4.2 人参皂苷的分析方法 | 第20页 |
| 1.4.2.1 薄层层析法 | 第20页 |
| 1.4.2.2 高效液相色谱法 | 第20页 |
| 1.4.3 人参皂苷的光谱特征和结构鉴定 | 第20-21页 |
| 1.5 本论文主要研究内容与意义 | 第21-23页 |
| 第二章 材料与方法 | 第23-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-28页 |
| 2.2.1 微生物培养产酶 | 第23-24页 |
| 2.2.1.1 微生物培养 | 第23-24页 |
| 2.2.1.2 微生物酶液提取 | 第24页 |
| 2.2.2 微生物酶反应 | 第24页 |
| 2.2.3 生物转化法制备人参皂苷C-K | 第24页 |
| 2.2.4 人参皂苷C-K的分离纯化 | 第24-26页 |
| 2.2.4.1 AB-8大孔吸附树脂脱糖 | 第24-25页 |
| 2.2.4.2 D-296离子交换树脂脱色 | 第25页 |
| 2.2.4.3 硅胶柱分离 | 第25-26页 |
| 2.2.4.4 结晶 | 第26页 |
| 2.2.5 高效液相色谱检测产品纯度 | 第26-27页 |
| 2.2.6 核磁共振测定产品结构 | 第27-28页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第28-46页 |
| 3.1 产人参皂苷酶Ⅰ型酶菌种及诱导物的选择 | 第28-29页 |
| 3.2 最适酶反应条件的确定 | 第29-31页 |
| 3.2.1 酶反应底物浓度确定 | 第29-30页 |
| 3.2.2 最佳反应温度的确定 | 第30-31页 |
| 3.3 生物转化法制备人参皂苷C-K | 第31-32页 |
| 3.4 人参皂苷C-K的分离纯化 | 第32-40页 |
| 3.4.1 AB-8大孔吸附树脂脱糖 | 第32页 |
| 3.4.2 D-296离子交换树脂脱色 | 第32-33页 |
| 3.4.3 硅胶柱分离 | 第33-39页 |
| 3.4.4 结晶 | 第39-40页 |
| 3.5 人参皂苷C-K的结构表征 | 第40-46页 |
| 3.5.1 一维~1H核磁共振谱(~1H NMR) | 第40-43页 |
| 3.5.2 一维~(13)C核磁共振谱(~(13)C NMR) | 第43-46页 |
| 第四章 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
| 致谢 | 第50页 |