| 中文摘要 | 第1-11页 |
| 英文摘要 | 第11-13页 |
| 1 引言 | 第13-31页 |
| ·植物开花的分子调控机理研究 | 第14-18页 |
| ·春化作用途径 | 第14-15页 |
| ·光周期途径 | 第15-17页 |
| ·自主开花途径 | 第17-18页 |
| ·赤霉素途径 | 第18页 |
| ·玉米 ID1 定义的 ID-domain 基因家族 | 第18-23页 |
| ·玉米 ID1 定义的 ID-domain 包含转录因子基因家族 | 第18-19页 |
| ·ID-domain 的结构特点 | 第19-21页 |
| ·ID-domain 之外的保守区 | 第21-22页 |
| ·ID-domain 基因家族的起源 | 第22-23页 |
| ·植物 ID1 和 IDD 基因的分离鉴定 | 第23-24页 |
| ·水稻和高粱中假定的 ID1 和 IDD 基因的分离 | 第23-24页 |
| ·拟南芥中 IDD 基因的分离 | 第24页 |
| ·植物 IDD 基因的功能 | 第24-25页 |
| ·二穗短柄草作为禾本科模式植物的依据 | 第25-30页 |
| ·二穗短柄草与其他禾本科之间的亲缘关系较近 | 第25-26页 |
| ·二穗短柄草具有禾本科植物最小的基因组 | 第26-27页 |
| ·可以作为温带禾本科植物功能基因组分析的重要工具 | 第27页 |
| ·易遗传转化 | 第27-28页 |
| ·丰富的遗传变异材料 | 第28-29页 |
| ·理想的形态与生长特性 | 第29-30页 |
| ·本研究的目的及意义 | 第30-31页 |
| 2 材料和方法 | 第31-47页 |
| ·实验材料 | 第31-32页 |
| ·植物材料 | 第31页 |
| ·植物材料培养 | 第31页 |
| ·菌株和质粒 | 第31页 |
| ·酶及生化试剂 | 第31-32页 |
| ·PCR 引物 | 第32页 |
| ·培养基 | 第32页 |
| ·实验方法 | 第32-47页 |
| ·RNA 提取 | 第32-33页 |
| ·cDNA 第一条链的合成 | 第33页 |
| ·cDNA 的回收纯化 | 第33-34页 |
| ·cDNA 的5’加尾反应 | 第34页 |
| ·cDNA 全长序列的获得 | 第34-37页 |
| ·BdID1 全长基因组序列的获得 | 第37-38页 |
| ·电泳目的片段的回收 | 第38-39页 |
| ·DNA 片段与克隆载体的连接 | 第39页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞制备 | 第39-40页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的转化 | 第40页 |
| ·质粒 DNA 的提取 | 第40-42页 |
| ·克隆载体的酶切鉴定 | 第42页 |
| ·半定量 RT-PCR 分析 | 第42页 |
| ·植物表达载体的构建 | 第42-44页 |
| ·植物表达载体的转化 | 第44-46页 |
| ·EMS 诱变方法 | 第46-47页 |
| 3 结果与分析 | 第47-61页 |
| ·短柄草的生长特性研究 | 第47-48页 |
| ·短柄草中 INDETERMINATE1 基因的分离 | 第48-51页 |
| ·短柄草 RNA 的提取及反转录 | 第48页 |
| ·BdID1 中间片段的分离 | 第48-49页 |
| ·BdID1 5’片段的分离 | 第49-50页 |
| ·BdID1 3’片段的分离 | 第50-51页 |
| ·BdID1 全长cDNA 的分离 | 第51页 |
| ·BdID1 的序列分析 | 第51-56页 |
| ·BdID1 的全长cDNA 分析 | 第51-54页 |
| ·BdID1 编码的氨基酸序列分析 | 第54页 |
| ·BdID1 基因组序列分析 | 第54-56页 |
| ·BdID1 基因的表达分析 | 第56-57页 |
| ·BdID1 基因功能的研究 | 第57-59页 |
| ·短柄草组培流程 | 第57-58页 |
| ·表达载体的构建 | 第58页 |
| ·抗性再生植株的获得 | 第58-59页 |
| ·突变体的筛选 | 第59-60页 |
| ·下一步的实验计划 | 第60-61页 |
| 4 讨论 | 第61-64页 |
| ·二穗短柄草作为模式植物的依据 | 第61页 |
| ·二穗短柄草 Bd21 的生理特性 | 第61-62页 |
| ·BdID1 的蛋白结构特征 | 第62页 |
| ·BdID1 的表达分析 | 第62-64页 |
| 5 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-77页 |
| 附录 | 第77-82页 |
| 致谢 | 第82页 |
