摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第1章 文献综述 | 第11-23页 |
1.1 VHG 乙醇发酵 | 第12-14页 |
1.1.1 VHG 乙醇发酵的定义 | 第12页 |
1.1.2 VHG 乙醇发酵的优缺点 | 第12-13页 |
1.1.3 促进 VHG 乙醇发酵的策略 | 第13-14页 |
1.2 酵母富集 Cr~(3+)及产 GTF | 第14-15页 |
1.2.1 富铬酵母选育 | 第14-15页 |
1.2.2 富铬酵母产 GTF 工艺优化 | 第15页 |
1.3 GTF 的分离、提取及检测 | 第15-17页 |
1.3.1 GTF 的分离、提取 | 第16页 |
1.3.2 GTF 含量的检测 | 第16页 |
1.3.3 GTF 功能活性的检测 | 第16-17页 |
1.4 GTF 结构及功能的研究 | 第17-20页 |
1.4.1 酵母源 GTF 结构的研究 | 第17-18页 |
1.4.2 GTF 类似物的结构研究 | 第18-19页 |
1.4.3 GTF 及类似物的功能 | 第19-20页 |
1.4.4 生物信息学方法在蛋白质结构和功能研究中的应用 | 第20页 |
1.5 本论文研究的意义和内容 | 第20-23页 |
1.5.1 研究思路的确立及其意义 | 第20-21页 |
1.5.2 主要研究内容 | 第21-23页 |
第2章 Cr~(3+)对 VHG 乙醇发酵的影响及酵母 GTF 的分离 | 第23-39页 |
2.1 引言 | 第23页 |
2.2 材料与方法 | 第23-30页 |
2.2.1 仪器 | 第23-25页 |
2.2.2 试剂 | 第25-26页 |
2.2.3 菌种 | 第26页 |
2.2.4 培养基 | 第26页 |
2.2.5 培养方法 | 第26页 |
2.2.6 发酵液中葡萄糖和乙醇浓度的测定 | 第26页 |
2.2.7 菌体生物量的测定 | 第26页 |
2.2.8 发酵参数的计算 | 第26-27页 |
2.2.9 葡萄糖与乙醇标准曲线的绘制 | 第27-29页 |
2.2.10 Cr~(3+)添加浓度 | 第29页 |
2.2.11 菌体总铬的测定 | 第29页 |
2.2.12 菌体有机铬的测定 | 第29页 |
2.2.13 GTF 的分离方法 | 第29-30页 |
2.2.14 铬标准曲线的绘制 | 第30页 |
2.2.15 实验数据处理方法 | 第30页 |
2.3 结果与讨论 | 第30-38页 |
2.3.1 Cr~(3+)浓度对 VHG 乙醇发酵的影响 | 第30-32页 |
2.3.2 不同时刻连续添加 Cr~(3+)对 VHG 乙醇发酵的影响 | 第32-33页 |
2.3.3 Cr~(3+)添加方式对 VHG 乙醇发酵进程和菌体生长的影响 | 第33-35页 |
2.3.4 最佳添加 Cr~(3+)条件下铬含量的测定 | 第35-36页 |
2.3.5 GTF 初级分离 | 第36-37页 |
2.3.6 GTF 次级分离 | 第37-38页 |
2.4 小结 | 第38-39页 |
第3章 酵母 GTF 对 VHG 乙醇发酵的影响 | 第39-49页 |
3.1 引言 | 第39页 |
3.2 材料与方法 | 第39-41页 |
3.2.1 仪器 | 第39-40页 |
3.2.2 试剂 | 第40页 |
3.2.3 菌种 | 第40页 |
3.2.4 培养基 | 第40-41页 |
3.2.5 分离产物 GTF 的添加 | 第41页 |
3.2.6 发酵液中乙醇和葡萄糖的测定 | 第41页 |
3.2.7 实验数据处理方法 | 第41页 |
3.3 结果与讨论 | 第41-46页 |
3.3.1 起始葡萄糖浓度为 280 g·L~(-1)时添加 GTF 对 VHG 发酵的影响 | 第41-42页 |
3.3.2 起始葡萄糖浓度为 290 g·L~(-1)时添加 GTF 对 VHG 发酵的影响 | 第42-44页 |
3.3.3 起始葡萄糖浓度为 310 g·L~(-1)时添加 GTF 对 VHG 发酵的影响 | 第44-45页 |
3.3.4 起始葡萄糖浓度为 320 g·L~(-1)时添加 GTF 对 VHG 发酵的影响 | 第45-46页 |
3.4 小结 | 第46-49页 |
第4章 分离产物性质和结构的初步研究 | 第49-64页 |
4.1 引言 | 第49页 |
4.2 材料与方法 | 第49-53页 |
4.2.1 仪器 | 第49-50页 |
4.2.2 试剂 | 第50页 |
4.2.3 菌种 | 第50-51页 |
4.2.4 GTF 分子量的测定 | 第51-52页 |
4.2.5 分离产物全波长扫描曲线 | 第52页 |
4.2.6 普通酵母及富铬酵母红外吸收光谱测定 | 第52页 |
4.2.7 GTF 氨基酸成分的测定 | 第52页 |
4.2.8 生物信息学的方法寻找分离产物的可能结构 | 第52页 |
4.2.9 探索分离产物与酵母体内己糖转运蛋白的关系 | 第52-53页 |
4.3 结果与讨论 | 第53-63页 |
4.3.1 GTF 分子量的测定 | 第53-54页 |
4.3.2 GTF 全波长扫描曲线 | 第54-56页 |
4.3.3 普通酵母及富铬酵母红外吸收光谱测定 | 第56-57页 |
4.3.4 GTF 氨基酸组成的测定 | 第57-58页 |
4.3.5 利用生物信息学的方法寻找分离产物的可能结构 | 第58-59页 |
4.3.6 探索分离产物与酵母体内己糖转运蛋白的关系 | 第59-63页 |
4.4 小结 | 第63-64页 |
第5章 总结与展望 | 第64-67页 |
5.1 结论 | 第64-65页 |
5.2 创新点 | 第65页 |
5.3 工作展望 | 第65-67页 |
参考文献 | 第67-73页 |
致谢 | 第73-75页 |
个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第75页 |