| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-26页 |
| 1.1 引言 | 第10页 |
| 1.2 荧光探针的分类 | 第10-16页 |
| 1.2.1 材料型荧光探针 | 第10-13页 |
| 1.2.2 多肽类荧光探针 | 第13-14页 |
| 1.2.3 有机小分子荧光探针 | 第14-16页 |
| 1.3 有机小分子荧光探针的传感机理 | 第16-21页 |
| 1.3.1 光诱导电子转移PET | 第16-17页 |
| 1.3.2 激发态分子内质子转移ESIPT | 第17-18页 |
| 1.3.3 能量共振转移FRET | 第18-19页 |
| 1.3.4 聚集诱导发光AIE | 第19-20页 |
| 1.3.5 分子内电荷转移ICT | 第20-21页 |
| 1.4 基于ICT机理的花菁类小分子荧光探针的应用研究进展 | 第21-25页 |
| 1.5 本论文的选题意义 | 第25-26页 |
| 第二章 基于部花青的双模式光学探针对的检测及体内外的生物成像应用 | 第26-38页 |
| 2.1 引言 | 第26-27页 |
| 2.2 实验部分 | 第27-30页 |
| 2.2.1 仪器与试剂 | 第27页 |
| 2.2.2 探针McyA的合成 | 第27-28页 |
| 2.2.3 探针McyA的光谱测试 | 第28-29页 |
| 2.2.4 细胞成像 | 第29页 |
| 2.2.5 动物成像 | 第29-30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-37页 |
| 2.3.1 探针McyA的合成表征 | 第30页 |
| 2.3.2 探针McyA的光谱性质研究 | 第30页 |
| 2.3.3 探针McyA对 N_2H_4 的机理研究 | 第30-31页 |
| 2.3.4 探针McyA的 pH稳定性和响应时间研究 | 第31-32页 |
| 2.3.5 探针McyA对 N_2H_4 的选择性 | 第32-33页 |
| 2.3.6 探针McyA对 N_2H_4 的浓度滴定 | 第33-34页 |
| 2.3.7 实际样品中N_2H_4 的测定 | 第34-35页 |
| 2.3.8 细胞毒性和成像实验 | 第35-36页 |
| 2.3.9 动物成像 | 第36-37页 |
| 2.4 本章小结 | 第37-38页 |
| 第三章 水溶性近红外荧光探针对二肽基肽酶IV的超灵敏检测及其生物学应用研究 | 第38-53页 |
| 3.1 引言 | 第38-39页 |
| 3.2 实验部分 | 第39-43页 |
| 3.2.1 仪器与试剂 | 第39页 |
| 3.2.2 探针HCA-D的合成 | 第39-41页 |
| 3.2.3 HCA-D对 DPP-Ⅳ测定的干扰和选择性考察 | 第41-42页 |
| 3.2.4 DPP-Ⅳ活性的定量测定 | 第42页 |
| 3.2.5 抑制剂实验 | 第42页 |
| 3.2.6 细胞培养和细胞毒性实验 | 第42页 |
| 3.2.7 细胞成像实验 | 第42-43页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第43-52页 |
| 3.3.1 HCA-D的合成表征 | 第43页 |
| 3.3.2 HCA-D的光谱性质 | 第43页 |
| 3.3.3 HCA-D对 DPP-Ⅳ测定的响应时间和pH的条件优化 | 第43-44页 |
| 3.3.4 机理研究 | 第44-46页 |
| 3.3.5 探针HCA-D对 DPP-Ⅳ的选择性实验 | 第46-47页 |
| 3.3.6 探针HCA-D对 DPP-Ⅳ的酶活力测定 | 第47-48页 |
| 3.3.7 抑制剂实验 | 第48-50页 |
| 3.3.8 血清样品中DPP-Ⅳ的测定 | 第50-51页 |
| 3.3.9 细胞及组织中DPP-Ⅳ的成像 | 第51-52页 |
| 3.4 本章小结 | 第52-53页 |
| 第四章 总结与展望 | 第53-54页 |
| 4.1 总结 | 第53页 |
| 4.2 展望 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-64页 |
| 附图 | 第64-70页 |
| 在学期间的研究成果 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
