| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-22页 |
| 1.1 植物开花调控机制 | 第13-16页 |
| 1.1.1 光周期途径对开花的调控 | 第13-14页 |
| 1.1.2 春化途径对开花的调控 | 第14-15页 |
| 1.1.3 赤霉素途径对开花的调控 | 第15页 |
| 1.1.4 自主途径对开花的调控 | 第15-16页 |
| 1.1.5 其他因素对开花的调控 | 第16页 |
| 1.2 开花调控相关基因研究进展 | 第16-20页 |
| 1.2.1 PEBP家族基因 | 第16-18页 |
| 1.2.2 MADS-box家族基因 | 第18-19页 |
| 1.2.3 microRNA与SPL家族基因 | 第19-20页 |
| 1.3 棉花花发育研究进展 | 第20-21页 |
| 1.4 研究的目的和意义 | 第21-22页 |
| 第二章 陆地棉PEBP基因家族的分析 | 第22-34页 |
| 2.1 试验材料 | 第22页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第22页 |
| 2.1.2 实验处理及取样 | 第22页 |
| 2.2 试验方法 | 第22-25页 |
| 2.2.1 陆地棉PEBP家族基因的鉴定与克隆 | 第22-24页 |
| 2.2.2 氨基酸序列分析和进化树分析 | 第24页 |
| 2.2.3 表达分析 | 第24-25页 |
| 2.3 结果与分析 | 第25-33页 |
| 2.3.1 棉花PEBP家族基因的鉴定及克隆 | 第25-26页 |
| 2.3.2 结构分析 | 第26-27页 |
| 2.3.3 进化树分析结果 | 第27-28页 |
| 2.3.4 表达分析结果 | 第28-33页 |
| 2.4 讨论 | 第33-34页 |
| 第三章 两个PEBP基因的功能分析 | 第34-41页 |
| 3.1 试验材料 | 第34页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第34页 |
| 3.1.2 实验处理及取样 | 第34页 |
| 3.2 试验方法 | 第34-36页 |
| 3.2.1 总RNA提取 | 第34页 |
| 3.2.2 cDNA第一链合成 | 第34页 |
| 3.2.3 qRT-PCR | 第34-35页 |
| 3.2.4 基因克隆及分析 | 第35页 |
| 3.2.5 载体构建 | 第35页 |
| 3.2.6 拟南芥转化 | 第35-36页 |
| 3.2.7 GUS染色 | 第36页 |
| 3.3 结果与分析 | 第36-39页 |
| 3.3.1 不同生育期品种中开花基因的表达模式 | 第36页 |
| 3.3.2 GhFT和GhPEBP2基因功能分析 | 第36-38页 |
| 3.3.3 GhFT和GhPEBP2基因启动子分析 | 第38-39页 |
| 3.4 讨论 | 第39-41页 |
| 第四章 陆地棉GhSPL家族基因的克隆及功能分析 | 第41-52页 |
| 4.1 材料与方法 | 第41页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第41页 |
| 4.1.2 实验处理及取样 | 第41页 |
| 4.2 试验方法 | 第41-42页 |
| 4.2.1 GhSPL家族基因的鉴定与克隆 | 第41页 |
| 4.2.2 染色体定位 | 第41页 |
| 4.2.3 系统进化树分析 | 第41-42页 |
| 4.2.4 保守模体的预测 | 第42页 |
| 4.2.5 陆地棉SPL家族基因表达分析 | 第42页 |
| 4.3 结果与分析 | 第42-50页 |
| 4.3.1 GhSPL家族基因的鉴定及克隆 | 第42-44页 |
| 4.3.2 染色体定位 | 第44页 |
| 4.3.3 结构和模体分析 | 第44-45页 |
| 4.3.4 不同物种SPL基因的系统进化树分析 | 第45-46页 |
| 4.3.5 表达模式分析 | 第46-49页 |
| 4.3.6 GhSPL3和GhSPL18基因功能分析 | 第49-50页 |
| 4.4 讨论 | 第50-52页 |
| 第五章 陆地棉GhSOC1和GhMADS42基因的克隆及功能分析 | 第52-61页 |
| 5.1 试验材料 | 第52页 |
| 5.1.1 材料 | 第52页 |
| 5.1.2 实验处理及取样 | 第52页 |
| 5.2 试验方法 | 第52-54页 |
| 5.2.1 总RNA提取 | 第52页 |
| 5.2.2 cDNA第一链合成 | 第52页 |
| 5.2.3 qRT-PCR | 第52-53页 |
| 5.2.4 基因克隆及分析 | 第53页 |
| 5.2.5 载体构建 | 第53页 |
| 5.2.6 拟南芥转化 | 第53-54页 |
| 5.2.7 棉花转化 | 第54页 |
| 5.3 结果与分析 | 第54-59页 |
| 5.3.1 GhSOC1和GhMADS42基因的克隆及分析 | 第54-55页 |
| 5.3.2 表达模式分析 | 第55-57页 |
| 5.3.3 功能分析 | 第57-59页 |
| 5.4 讨论 | 第59-61页 |
| 第六章 GhSOC1蛋白与相关转录因子之间的调控 | 第61-66页 |
| 6.1 试验材料 | 第61页 |
| 6.2 试验方法 | 第61-63页 |
| 6.2.1 启动子序列分析 | 第61页 |
| 6.2.2 染色质免疫共沉淀 | 第61-63页 |
| 6.2.3 q PCR分析 | 第63页 |
| 6.3 结果与分析 | 第63-65页 |
| 6.3.1 GhSOC1蛋白与GhFT和GhMADS基因之间的关系 | 第63页 |
| 6.3.2 GhSOC1蛋白与GhSPL基因之间的关系 | 第63-65页 |
| 6.4 讨论 | 第65-66页 |
| 第七章 开花相关基因的蛋白互作分析 | 第66-73页 |
| 7.1 试验材料 | 第66页 |
| 7.1.1 植物材料 | 第66页 |
| 7.1.2 质粒载体和菌株 | 第66页 |
| 7.2 试验方法 | 第66-68页 |
| 7.2.1 酵母双杂交检测蛋白质之间的相互作用 | 第66-68页 |
| 7.2.2 双分子荧光互补验证蛋白互作 | 第68页 |
| 7.3 结果与分析 | 第68-72页 |
| 7.3.1 GhSOC1与GhMADS蛋白的体外互作 | 第68-69页 |
| 7.3.2 GhSOC1与GhMADS蛋白的体内互作 | 第69-70页 |
| 7.3.3 GhFD与棉花中FT和PEBP2蛋白的体外互作 | 第70-71页 |
| 7.3.4 GhFD与棉花中FT和PEBP2蛋白的体内互作 | 第71-72页 |
| 7.4 讨论 | 第72-73页 |
| 第八章 结论与展望 | 第73-76页 |
| 8.1 结论与创新点 | 第73-74页 |
| 8.2 讨论与展望 | 第74-76页 |
| 参考文献 | 第76-89页 |
| 致谢 | 第89-90页 |
| 作者简介 | 第90页 |
