| 学位论文数据集 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 目录 | 第9-13页 |
| Contents | 第13-17页 |
| 第一章 绪论 | 第17-19页 |
| 第二章 文献综述 | 第19-39页 |
| 2.1 液相层析简介 | 第19-20页 |
| 2.2 液相层析介质 | 第20-26页 |
| 2.2.1 载体的基本特性 | 第20页 |
| 2.2.2 液相层析载体的类型 | 第20-23页 |
| 2.2.2.1 无机材料 | 第21页 |
| 2.2.2.2 天然多糖 | 第21-22页 |
| 2.2.2.3 有机高分子聚合物 | 第22-23页 |
| 2.2.3 聚合物型层析介质的性能特点 | 第23-24页 |
| 2.2.4 聚合物型层析介质性能的表征与评价 | 第24-26页 |
| 2.2.4.1 介质物化性质的表征 | 第24-26页 |
| 2.2.4.2 介质层析性能的评价 | 第26页 |
| 2.3 疏水作用层析 | 第26-29页 |
| 2.3.1 疏水作用原理 | 第26-27页 |
| 2.3.2 影响疏水作用层析的主要因素 | 第27-29页 |
| 2.3.2.1 固定相的影响 | 第27-29页 |
| 2.3.2.2 流动相中盐的影响 | 第29页 |
| 2.4 甲基丙烯酸环氧丙酯高分子聚合物微球的制备及应用 | 第29-37页 |
| 2.4.1 PGMA的结构与特性 | 第29-30页 |
| 2.4.2 PGMA的制备技术进展 | 第30-32页 |
| 2.4.2.1 配方 | 第30-32页 |
| 2.4.2.2 合成方法 | 第32页 |
| 2.4.3 甲基丙烯酸环氧丙酯高分子聚合物微球应用研究进展 | 第32-37页 |
| 2.4.3.1 PGMA用于酶固定 | 第33-34页 |
| 2.4.3.2 PGMA用作离子层析填料 | 第34-35页 |
| 2.4.3.3 PGMA用作亲和介质 | 第35-36页 |
| 2.4.3.4 PGMA用作疏水介质 | 第36-37页 |
| 2.5 课题设计思想 | 第37页 |
| 2.6 本章小结 | 第37-39页 |
| 第三章 P(GMA-DVB)微球的制备 | 第39-49页 |
| 3.1 引言 | 第39页 |
| 3.2 实验试剂及设备 | 第39-41页 |
| 3.2.1 试剂 | 第39-40页 |
| 3.2.2 设备 | 第40-41页 |
| 3.3 实验方法 | 第41-43页 |
| 3.3.1 P(GMA-DVB)微球的制备 | 第41-42页 |
| 3.3.2 P(GMA-DVB)微球表征方法 | 第42-43页 |
| 3.3.2.1 微球物理性质检测方法 | 第42页 |
| 3.3.2.2 微球表面环氧基含量检测方法 | 第42-43页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第43-47页 |
| 3.4.1 P(GMA-DVB)微球的结构特征 | 第43-45页 |
| 3.4.2 微球的形态、表面特征及结构特征 | 第45页 |
| 3.4.3 单体中DVB含量对微球平均孔径和比表面积的影响 | 第45-46页 |
| 3.4.4 微球表面环氧基含量的检测 | 第46-47页 |
| 3.5 本章小结 | 第47-49页 |
| 第四章 P(GMA-DVB)微球环氧基水解及水解后微球的评价 | 第49-57页 |
| 4.1 引言 | 第49-50页 |
| 4.1.1 环氧基的主要反应类型 | 第49-50页 |
| 4.1.1.1 酸催化的开环反应 | 第49页 |
| 4.1.1.2 碱催化的开环反应 | 第49-50页 |
| 4.1.2 本章中的微球改性策略 | 第50页 |
| 4.2 实验试剂及设备 | 第50-51页 |
| 4.2.1 试剂 | 第50-51页 |
| 4.2.2 设备 | 第51页 |
| 4.3 实验方法 | 第51-52页 |
| 4.3.1 环氧基水解条件优化方法 | 第51页 |
| 4.3.2 水解微球对BSA的吸附解吸实验方法 | 第51-52页 |
| 4.3.3 蛋白质浓度的测定方法 | 第52页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第52-56页 |
| 4.4.1 环氧基水解 | 第52-55页 |
| 4.4.2 水解微球对BSA的吸附解吸性能 | 第55-56页 |
| 4.5 本章小结 | 第56-57页 |
| 第五章 P(GMA-DVB)微球偶联PEG改性 | 第57-67页 |
| 5.1 引言 | 第57页 |
| 5.2 实验试剂及设备 | 第57-58页 |
| 5.2.1 试剂 | 第57页 |
| 5.2.2 设备 | 第57-58页 |
| 5.3 实验方法 | 第58-60页 |
| 5.3.1 微球PEG改性条件优化 | 第58页 |
| 5.3.2 选择不同分子量的PEG作配基对微球改性 | 第58页 |
| 5.3.3 改性后剩余环氧基的封闭 | 第58页 |
| 5.3.4 PEG固载密度的检测 | 第58-60页 |
| 5.3.4.1 检测原理 | 第58-59页 |
| 5.3.4.2 检测步骤 | 第59-60页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第60-65页 |
| 5.4.1 改性条件的优化 | 第60-63页 |
| 5.4.1.1 溶剂体系对PEG配基固载密度的影响 | 第60-61页 |
| 5.4.1.2 改性反应温度对PEG配基固载密度的影响 | 第61页 |
| 5.4.1.3 改性反应时间对PEG配基固载密度的影响 | 第61-62页 |
| 5.4.1.4 改性反应投料比对PEG配基固载密度的影响 | 第62-63页 |
| 5.4.1.5 改性条件优化小结 | 第63页 |
| 5.4.2 改性后剩余活性环氧基的封闭 | 第63-65页 |
| 5.4.2.1 剩余环氧基的水解 | 第64页 |
| 5.4.2.2 小分子化合物封闭剩余环氧基 | 第64-65页 |
| 5.4.3 PEG改性反应的放大 | 第65页 |
| 5.5 本章小结 | 第65-67页 |
| 第六章 PEG改性的P(GMA-DVB)微球的评价 | 第67-83页 |
| 6.1 引言 | 第67页 |
| 6.2 试剂及设备 | 第67-68页 |
| 6.2.1 试剂 | 第67-68页 |
| 6.2.2 设备 | 第68页 |
| 6.3 实验方法 | 第68-70页 |
| 6.3.1 PEG改性的P(GMA-DVB)微球的表征方法 | 第68-69页 |
| 6.3.1.1 PEG固载密度的检测方法 | 第68页 |
| 6.3.1.2 亲水性检测方法 | 第68-69页 |
| 6.3.2 改性P(GMA-DVB)微球静态吸附性能考察方法 | 第69-70页 |
| 6.3.2.1 吸附动力学测定方法 | 第69页 |
| 6.3.2.2 吸附等温线及回收率测定方法 | 第69页 |
| 6.3.2.3 蛋白质浓度的测定方法 | 第69页 |
| 6.3.2.4 胰蛋白酶的活性测定方法 | 第69-70页 |
| 6.3.3 改性P(GMA-DVB)微球的层析行为考察方法 | 第70页 |
| 6.3.3.1 流速的测定 | 第70页 |
| 6.3.3.2 穿透曲线的测定 | 第70页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第70-82页 |
| 6.4.1 PEG改性的P(GMA-DVB)微球的表征 | 第70-72页 |
| 6.4.1.1 改性P(GMA-DVB)微球PEG固载密度 | 第71页 |
| 6.4.1.2 改性后介质亲水性表征 | 第71-72页 |
| 6.4.2 改性P(GMA-DVB)微球静态吸附性能 | 第72-80页 |
| 6.4.2.1 静态吸附动力学 | 第72-73页 |
| 6.4.2.2 吸附等温线 | 第73-75页 |
| 6.4.2.3 盐浓度对介质吸附能力的影响 | 第75-76页 |
| 6.4.2.4 单体中DVB含量对介质吸附能力的影响 | 第76-77页 |
| 6.4.2.5 配基PEG分子量的大小对介质吸附能力的影响 | 第77-78页 |
| 6.4.2.6 介质的循环利用 | 第78页 |
| 6.4.2.7 介质吸附蛋白质的回收率 | 第78-80页 |
| 6.4.3 改性介质的层析行为 | 第80-82页 |
| 6.4.3.1 压力流速曲线 | 第80-81页 |
| 6.4.3.2 介质的动态吸附性能 | 第81页 |
| 6.4.3.3 自制疏水介质与市售琼脂糖疏水介质的比较 | 第81-82页 |
| 6.5 本章小结 | 第82-83页 |
| 第七章 结论与展望 | 第83-87页 |
| 7.1 本研究工作的总结 | 第83-85页 |
| 7.1.1 本论文的实验结果 | 第83-85页 |
| 7.1.2 本论文的创新之处 | 第85页 |
| 7.2 对本论文研究的展望 | 第85-87页 |
| 参考文献 | 第87-93页 |
| 附录 | 第93-98页 |
| 附录A 标准曲线 | 第93-97页 |
| 附录B 符号说明 | 第97-98页 |
| 致谢 | 第98-99页 |
| 作者简介及发表的学术论文 | 第99页 |
