| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-10页 |
| 文献综述 | 第14-32页 |
| 第一章 多能干细胞的研究进展 | 第14-24页 |
| 1.1 不同类型多能干细胞的研究 | 第14-19页 |
| 1.1.1 全能干细胞 | 第14-16页 |
| 1.1.2 多能干细胞 | 第16-17页 |
| 1.1.3 专能干细胞 | 第17-18页 |
| 1.1.4 单能干细胞 | 第18-19页 |
| 1.2 细胞重编程相关技术 | 第19-24页 |
| 1.2.1 核移植 | 第20页 |
| 1.2.2 细胞融合 | 第20页 |
| 1.2.3 通过导入特定转录因子实现重编程 | 第20-24页 |
| 第二章 多能性维持相关基因的研究进展 | 第24-32页 |
| 2.1 NANOG的研究 | 第24-26页 |
| 2.1.1 NANOG的假基因和异构体 | 第24页 |
| 2.1.2 NANOG的翻译后修饰 | 第24-25页 |
| 2.1.3 NANOG被其它转录因子调控 | 第25-26页 |
| 2.1.4 NANOG在重编程和多能性维持中的作用 | 第26页 |
| 2.2 ESRRB相关的研究 | 第26-29页 |
| 2.2.1 ESRRB的剪切异构体 | 第26-27页 |
| 2.2.2 ESRRB被其它转录因子和信号通路调控 | 第27-28页 |
| 2.2.3 ESRRB在重编程中的作用 | 第28-29页 |
| 2.3 ACTIVIN/NODAL信号通路 | 第29-32页 |
| 2.3.1 ACTIVIN/NODAL通路配体和受体 | 第29页 |
| 2.3.2 ACTIVIN/NODAL与多能性 | 第29-30页 |
| 2.3.3 ACTIVIN/NODAL与胚胎发育 | 第30页 |
| 2.3.4 ACTIVIN/NODAL与细胞周期 | 第30-32页 |
| 试验研究 | 第32-79页 |
| 第三章 NANOG在猪多能干细胞中功能研究 | 第32-46页 |
| 3.1 材料和方法 | 第32-35页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第32-33页 |
| 3.1.2 试验方法 | 第33-35页 |
| 3.2 结果 | 第35-44页 |
| 3.2.1 猪NANOG基因克隆和序列比对 | 第35-37页 |
| 3.2.2 猪NANOG序列基因组结构和假基因分析 | 第37-39页 |
| 3.2.3 猪NANOG启动子活性分析 | 第39-40页 |
| 3.2.4 猪NANOG启动子核心序列分析 | 第40-41页 |
| 3.2.5 猪NANOG启动子甲基化水平分析 | 第41-43页 |
| 3.2.6 猪NANOG转录调控功能分析 | 第43-44页 |
| 3.3 讨论 | 第44-45页 |
| 3.4 小结 | 第45-46页 |
| 第四章 ESRRB可以代替NANOG维持猪多能干细胞 | 第46-59页 |
| 4.1 材料和方法 | 第46-49页 |
| 4.1.1 试验材料与耗材 | 第46页 |
| 4.1.2 试验方法 | 第46-49页 |
| 4.2 结果 | 第49-57页 |
| 4.2.1 ESRRB在猪多能干细胞中高表达 | 第49-50页 |
| 4.2.2 猪ESRRB克隆 | 第50-51页 |
| 4.2.3 猪ESRRB蛋白核定位信号分析 | 第51-53页 |
| 4.2.4 过表达ESRRB可以调控多能基因表达 | 第53-55页 |
| 4.2.5 过表达ESRRB可以促进细胞重编程 | 第55-56页 |
| 4.2.6 对OSKME诱导的IPS细胞进行检测 | 第56页 |
| 4.2.7 敲低ESRRB可以导致猪多能干细胞分化 | 第56-57页 |
| 4.3 讨论 | 第57-58页 |
| 4.4 小结 | 第58-59页 |
| 第五章 ESRRB及雌激素受体家族剪切体功能分析 | 第59-67页 |
| 5.1 材料和方法 | 第59-60页 |
| 5.1.1 试验材料与耗材 | 第59页 |
| 5.1.2 试验方法 | 第59-60页 |
| 5.2 结果 | 第60-65页 |
| 5.2.1 雌激素相关受体在猪各组织中的表达谱研究 | 第60-61页 |
| 5.2.2 猪ESRRB和ESRRA基因结构分析 | 第61-62页 |
| 5.2.3 猪ESRRG分析 | 第62-63页 |
| 5.2.4 猪雌激素相关受体蛋白结构域分析 | 第63-64页 |
| 5.2.5 雌激素相关受体基因功能分析 | 第64-65页 |
| 5.3 讨论 | 第65-66页 |
| 5.4 小结 | 第66-67页 |
| 第六章 NODAL/ACTIVIN通路可以调控NANOG表达并维持猪IPS细胞自我更新 | 第67-79页 |
| 6.1 材料和方法 | 第67-69页 |
| 6.1.1 试验材料与耗材 | 第67页 |
| 6.1.2 试验方法 | 第67-69页 |
| 6.2 结果 | 第69-76页 |
| 6.2.1 ACTIVIN-SMAD通路相关基因在不同猪多能干细胞中的表达谱分析 | 第69-71页 |
| 6.2.2 ACTIVIN A可以激活猪多能干细胞中的SMAD | 第71-74页 |
| 6.2.3 SMAD2/3 可以激活NANOG启动子活性 | 第74页 |
| 6.2.4 SMAD2/3 可以激活OCT4 | 第74-76页 |
| 6.2.5 ACTIVIN-SMAD与OCT4/SOX2协同促进多能基因表达 | 第76页 |
| 6.3 讨论 | 第76-78页 |
| 6.4 小结 | 第78-79页 |
| 结论 | 第79-80页 |
| 论文创新点及下一步研究方向 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-91页 |
| 附录 | 第91-96页 |
| 致谢 | 第96-97页 |
| 作者简介 | 第97-98页 |
