| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-30页 |
| 1.1 梨小食心虫研究概况 | 第14-21页 |
| 1.1.1 起源与分布 | 第14-15页 |
| 1.1.2 生物学及行为学习性 | 第15-16页 |
| 1.1.3 寄主效应 | 第16-17页 |
| 1.1.4 人工饲养技术 | 第17-18页 |
| 1.1.5 无公害防治策略 | 第18-21页 |
| 1.2 全球气候变暖对昆虫的影响 | 第21-25页 |
| 1.2.1 全球气候变暖之争 | 第21-23页 |
| 1.2.2 昆虫对气候变暖的响应 | 第23-25页 |
| 1.2.3 气候变暖背景下昆虫学的研究方向 | 第25页 |
| 1.3 高温对昆虫的影响 | 第25-29页 |
| 1.3.1 高温对昆虫的损伤 | 第25-27页 |
| 1.3.2 昆虫抵御高温的对策 | 第27-29页 |
| 1.4 研究思路 | 第29-30页 |
| 1.4.1 目的和意义 | 第29页 |
| 1.4.2 内容和方案 | 第29-30页 |
| 第二章 短期高温对梨小食心虫存活率的影响 | 第30-38页 |
| 2.1 试验材料 | 第31页 |
| 2.1.1 主要器材 | 第31页 |
| 2.1.2 试虫 | 第31页 |
| 2.2 试验方法 | 第31-32页 |
| 2.2.1 高温胁迫后存活率测定 | 第31页 |
| 2.2.2 短期高温锻炼后存活率测定 | 第31-32页 |
| 2.2.3 数据处理 | 第32页 |
| 2.3 结果与分析 | 第32-36页 |
| 2.3.1 高温胁迫后的存活率 | 第32-33页 |
| 2.3.2 高温胁迫后致死时间 | 第33-34页 |
| 2.3.3 短期高温锻炼后的存活率 | 第34-36页 |
| 2.4 小结与讨论 | 第36-38页 |
| 第三章 短期高温对梨小食心虫成虫生物学参数的影响 | 第38-46页 |
| 3.1 试验材料 | 第38页 |
| 3.1.1 主要器材 | 第38页 |
| 3.1.2 试虫 | 第38页 |
| 3.2 试验方法 | 第38-40页 |
| 3.2.1 短期高温胁迫对成虫的影响 | 第38-39页 |
| 3.2.2 短期高温胁迫对成虫生殖力的损伤 | 第39页 |
| 3.2.3 数据处理 | 第39-40页 |
| 3.3 结果与分析 | 第40-43页 |
| 3.3.1 短期高温胁迫对成虫寿命的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.2 短期高温胁迫对产卵量的影响 | 第41页 |
| 3.3.3 短期高温胁迫对孵化率的影响 | 第41-42页 |
| 3.3.4 短期高温胁迫对成虫生殖力的损伤 | 第42-43页 |
| 3.4 小结与讨论 | 第43-46页 |
| 第四章 梨小食心虫热激蛋白和持家基因的cDNA 克隆及序列分析 | 第46-77页 |
| 4.1 试验材料 | 第46-48页 |
| 4.1.1 主要仪器 | 第46-47页 |
| 4.1.2 成品试剂 | 第47-48页 |
| 4.1.3 自配试剂 | 第48页 |
| 4.1.4 试虫 | 第48页 |
| 4.2 试验方法 | 第48-59页 |
| 4.2.1 引物设计 | 第48-49页 |
| 4.2.2 总 RNA 提取及质量检测 | 第49-50页 |
| 4.2.3 反转录 | 第50页 |
| 4.2.4 PCR 及结果检测 | 第50-51页 |
| 4.2.5 PCR 产物纯化 | 第51页 |
| 4.2.6 产物连接 | 第51-52页 |
| 4.2.7 连接产物转化 | 第52页 |
| 4.2.8 蓝白斑筛选 | 第52页 |
| 4.2.9 菌液 PCR 及结果检测 | 第52-53页 |
| 4.2.10 测序 | 第53页 |
| 4.2.11 3’RACE 及结果检测 | 第53-55页 |
| 4.2.12 5’RACE 及结果检测 | 第55-58页 |
| 4.2.13 数据分析 | 第58-59页 |
| 4.3 结果与分析 | 第59-75页 |
| 4.3.1 总 RNA 提取 | 第59-60页 |
| 4.3.2 基因片段扩增 | 第60-61页 |
| 4.3.3 基因 3’RACE 扩增 | 第61页 |
| 4.3.4 基因 5’RACE 扩增 | 第61-62页 |
| 4.3.5 序列分析 | 第62-75页 |
| 4.4 小结与讨论 | 第75-77页 |
| 第五章 高温条件下 Gmhsp90 和 Gmhsp70 的 mRNA 表达 | 第77-93页 |
| 5.1 试验材料 | 第77-79页 |
| 5.1.1 主要器材和试剂 | 第77-78页 |
| 5.1.2 试虫 | 第78-79页 |
| 5.2 试验方法 | 第79-82页 |
| 5.2.1 高温胁迫处理 | 第79页 |
| 5.2.2 总 RNA 提取及检测 | 第79-80页 |
| 5.2.3 基因组 DNA 的去除及 RNA 质量检测 | 第80页 |
| 5.2.4 反转录 | 第80页 |
| 5.2.5 qPCR | 第80-81页 |
| 5.2.6 标准曲线构建 | 第81-82页 |
| 5.2.7 内参基因稳定性评价 | 第82页 |
| 5.2.8 数据处理 | 第82页 |
| 5.3 结果与分析 | 第82-90页 |
| 5.3.1 内参基因稳定性分析 | 第82-84页 |
| 5.3.2 内参基因扩增效率分析 | 第84-86页 |
| 5.3.3 不同温度下热激蛋白表达量 | 第86-88页 |
| 5.3.4 不同时间的热激蛋白表达量 | 第88-89页 |
| 5.3.5 温度锻炼后的热激蛋白表达量 | 第89-90页 |
| 5.4 小结与讨论 | 第90-93页 |
| 第六章 结论与展望 | 第93-94页 |
| 6.1 结论 | 第93页 |
| 6.2 展望 | 第93页 |
| 6.3 本研究的创新点 | 第93-94页 |
| 参考文献 | 第94-110页 |
| 缩略词 | 第110-111页 |
| 致谢 | 第111-112页 |
| 作者简介 | 第112页 |
