| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5页 |
| 第一章 文献综述 | 第8-19页 |
| 1.1 光合蓝细菌概述 | 第8-10页 |
| 1.1.1 蓝细菌的简介 | 第8页 |
| 1.1.2 集胞藻PCC 6803 的简介 | 第8-9页 |
| 1.1.3 蓝细菌抗逆性机理的研究 | 第9-10页 |
| 1.2 蓝细菌抗盐机理研究 | 第10-15页 |
| 1.2.1 蓝细菌抗盐机理的研究背景 | 第10-12页 |
| 1.2.2 蓝细菌对盐的耐受机制 | 第12-13页 |
| 1.2.3 蓝细菌在盐胁迫下的离子转运 | 第13-14页 |
| 1.2.4 蓝细菌中相容性溶质的合成及运输 | 第14-15页 |
| 1.3 组学技术的简介 | 第15-17页 |
| 1.3.1 代谢组学研究方法 | 第15-16页 |
| 1.3.2 组学技术在蓝细菌抗盐机理方面的研究 | 第16-17页 |
| 1.4 本研究主要内容概述 | 第17-19页 |
| 第二章 盐胁迫下集胞藻PCC 6803 转运蛋白缺失株表型研究 | 第19-35页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-22页 |
| 2.1.1 实验对象及其来源 | 第19-20页 |
| 2.1.2 实验仪器设备 | 第20-21页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第21-22页 |
| 2.2 实验设计与方法 | 第22-26页 |
| 2.2.1 胁迫条件下的比较生长分析 | 第22-24页 |
| 2.2.2 基因slr1216互补突变株的构建 | 第24-26页 |
| 2.2.3 流式细胞分析 | 第26页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第26-33页 |
| 2.3.1 盐胁迫条件下转运蛋白突变体库的筛选 | 第26-28页 |
| 2.3.2 其他胁迫条件下野生株与突变株?slr1216生长速率差异 | 第28-30页 |
| 2.3.3 盐胁迫下镁对野生株与突变株?slr1216生长速率的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.4 互补突变株?slr1216/pJA2-slr1216的构建及表型筛选 | 第31-32页 |
| 2.3.5 野生株与突变株?slr1216的叶绿素含量分析 | 第32-33页 |
| 2.4 本章小结 | 第33-35页 |
| 第三章 基于LC-MS和GC-MS技术的代谢组学分析 | 第35-45页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第35-40页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第35-37页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第37-40页 |
| 3.2 实验结果与讨论 | 第40-44页 |
| 3.2.1 基于LC-MS代谢组学的数据分析 | 第40-41页 |
| 3.2.2 基于GC-MS代谢组学的数据分析 | 第41-42页 |
| 3.2.3 与相容性溶质合成相关的化合物比较 | 第42-44页 |
| 3.3 本章小结 | 第44-45页 |
| 第四章 相容性溶质的测定分析 | 第45-55页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第45-50页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第45-46页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第46-50页 |
| 4.2 实验结果与讨论 | 第50-54页 |
| 4.2.1 野生株和突变株?slr1216中蔗糖和海藻糖测定分析 | 第50页 |
| 4.2.2 相容性溶质葡萄糖甘油的测定分析 | 第50-52页 |
| 4.2.3 RT-qPCR分析 | 第52-53页 |
| 4.2.4 外源相容性溶质葡萄糖甘油添加的影响分析 | 第53-54页 |
| 4.3 本章小结 | 第54-55页 |
| 第五章 结论与展望 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-67页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第67-68页 |
| 附表 | 第68-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
