| 中文摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 英文缩略表 | 第12-14页 |
| 文献综述 | 第14-25页 |
| 试验研究 | 第25-104页 |
| 第一章 cLSm14A基因克隆与生物信息学分析 | 第25-54页 |
| 1 材料 | 第25-27页 |
| 1.1 试验动物、载体、菌株 | 第25页 |
| 1.2 主要试剂 | 第25-26页 |
| 1.3 主要仪器 | 第26页 |
| 1.4 主要试剂配制 | 第26-27页 |
| 2 方法 | 第27-33页 |
| 2.1 c LSm14A基因扩增 | 第27-28页 |
| 2.2 c LSm14A基因克隆及鉴定 | 第28-30页 |
| 2.3 c LSm14A基因生物信息学分析 | 第30-33页 |
| 3 结果 | 第33-50页 |
| 3.1 c LSm14A分子PCR扩增结果 | 第33-34页 |
| 3.2 c LSm14A基因克隆及鉴定结果 | 第34-38页 |
| 3.3 c LSm14A生物信息学分析结果 | 第38-50页 |
| 4 讨论 | 第50-53页 |
| 4.1 关于倒毛鸡、绿壳蛋鸡、普定高脚鸡 | 第50-51页 |
| 4.2 关于c LSm14A分子克隆 | 第51页 |
| 4.3 关于c LSm14A生物信息学分析 | 第51-53页 |
| 5 小结 | 第53-54页 |
| 第二章 cLSm14A原核表达与抗原性分析 | 第54-74页 |
| 1 材料 | 第54-56页 |
| 1.1 实验动物、载体、菌株 | 第54页 |
| 1.2 主要试剂 | 第54-55页 |
| 1.3 主要仪器 | 第55页 |
| 1.4 主要试剂的配置 | 第55-56页 |
| 2 方法 | 第56-63页 |
| 2.1 c LSm14A原核表达载体构建及鉴定 | 第56-59页 |
| 2.2 c LSm14A原核表达、纯化及鉴定 | 第59-62页 |
| 2.3 抗c LSm14A多克隆抗体的制备 | 第62-63页 |
| 3 结果 | 第63-71页 |
| 3.1 c LSm14A原核表达质粒的构建及鉴定结果 | 第63-69页 |
| 3.2 c LSm14A原核表达、纯化及鉴定结果 | 第69-70页 |
| 3.3 抗c LSm14A多克隆抗体的制备检测结果 | 第70-71页 |
| 4 讨论 | 第71-73页 |
| 4.1 关于c LSm14A原核表达载体的构建 | 第71-72页 |
| 4.2 关于c LSm14A蛋白的诱导表达 | 第72页 |
| 4.3 关于抗c LSm14A多克隆抗体的制备 | 第72-73页 |
| 5 小结 | 第73-74页 |
| 第三章 cLSm14A真核表达载体构建与表达 | 第74-85页 |
| 1 材料 | 第74-75页 |
| 1.1 载体、细胞 | 第74页 |
| 1.2 主要试剂 | 第74页 |
| 1.3 主要仪器 | 第74-75页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第75页 |
| 2 方法 | 第75-79页 |
| 2.1 c LSm14A真核表达质粒构建及鉴定 | 第75-76页 |
| 2.2 c LSm14A真核表达质粒在HEK293细胞中的定位 | 第76-79页 |
| 3 结果 | 第79-82页 |
| 3.1 c LSm14A真核表达质粒构建与鉴定结果 | 第79-81页 |
| 3.2 c LSm14A真核表达质粒在HEK293细胞中的定位 | 第81-82页 |
| 4 讨论 | 第82-84页 |
| 4.1 关于c LSm14A真核表达质粒构建 | 第82-83页 |
| 4.2 关于c LSm14A真核表达质粒在HEK293细胞中的定位 | 第83-84页 |
| 5 小结 | 第84-85页 |
| 第四章 鸡源LSm14A组织分布与NDV对LSm14A表达水平影响研究 | 第85-104页 |
| 1 材料 | 第85-87页 |
| 1.1 试验鸡、鸡胚 | 第85页 |
| 1.2 试验毒株 | 第85-86页 |
| 1.3 主要试剂 | 第86页 |
| 1.4 主要仪器 | 第86页 |
| 1.5 主要试剂的配制 | 第86-87页 |
| 2 方法 | 第87-91页 |
| 2.1 c LSm14A实时荧光定量PCR检测方法的建立 | 第87-88页 |
| 2.2 c LSm14A在正常鸡不同组织分布情况检测 | 第88页 |
| 2.3 NDV复壮、EID50的测定与动物感染试验 | 第88-90页 |
| 2.4 NDV对c LSm14A转录水平的影响检测 | 第90-91页 |
| 3 结果 | 第91-100页 |
| 3.1 c LSm14A实时荧光定量PCR检测方法的建立结果 | 第91-92页 |
| 3.2 c LSm14A在健康鸡不同组织分布情况检测结果 | 第92-93页 |
| 3.3 NDV EID50测定结果 | 第93-95页 |
| 3.4 NDV对c LSm14A转录水平的影响检测结果 | 第95-100页 |
| 4 讨论 | 第100-103页 |
| 4.1 关于荧光定量PCR在m RNA转录水平检测的应用 | 第100页 |
| 4.2 关于c LSm14A在绿壳蛋鸡不同组织m RNA转录水平的检测 | 第100-101页 |
| 4.3 关于NDV的选择 | 第101-102页 |
| 4.4 关于NDV对c LSm14A m RNA转录水平的影响 | 第102-103页 |
| 5 小结 | 第103-104页 |
| 致谢 | 第104-106页 |
| 参考文献 | 第106-115页 |
