| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语/符号说明 | 第12-15页 |
| 前言 | 第15-29页 |
| 研究现状、成果 | 第15-27页 |
| 研究目的、方法 | 第27-29页 |
| 一、BDMP的两种提取方法比较 | 第29-42页 |
| 1.1 对象和方法 | 第29-36页 |
| 1.1.1 实验动物、主要仪器 | 第29-30页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第30页 |
| 1.1.3 实验方法 | 第30-36页 |
| 1.1.4 统计分析 | 第36页 |
| 1.2 结果 | 第36-39页 |
| 1.2.1 流式细胞仪检测分析两种方法提取的BDMP | 第36-38页 |
| 1.2.2 两种提取方法所得到的BDMP内RNA含量的检测 | 第38-39页 |
| 1.3 讨论 | 第39-41页 |
| 1.4 小结 | 第41-42页 |
| 二、流式细胞技术定量检测TBI后小鼠脑源性微粒的含量 | 第42-53页 |
| 2.1 对象和方法 | 第42-45页 |
| 2.1.1 实验动物、主要仪器 | 第42-43页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第43页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第43-45页 |
| 2.1.4 统计分析 | 第45页 |
| 2.2 结果 | 第45-50页 |
| 2.2.1 流式细胞仪检测BDMP方法的设定 | 第45-46页 |
| 2.2.2 方法的重现性 | 第46-47页 |
| 2.2.3 样本的稳定性 | 第47页 |
| 2.2.4 颅脑创伤小鼠与假手术小鼠BDMP含量的测定 | 第47-50页 |
| 2.3 讨论 | 第50-51页 |
| 2.3.1 MP的准备 | 第50页 |
| 2.3.2 流式细胞技术在检测MP中的应用 | 第50-51页 |
| 2.3.3 流式细胞技术的方法验证 | 第51页 |
| 2.3.4 颅脑创伤对小鼠BDMP生成的影响 | 第51页 |
| 2.4 小结 | 第51-53页 |
| 三、冻存对BDMP的影响 | 第53-61页 |
| 3.1 对象和方法 | 第53-55页 |
| 3.1.1 实验动物、主要仪器 | 第53页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第53-54页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第54-55页 |
| 3.1.4 统计分析 | 第55页 |
| 3.2 结果 | 第55-59页 |
| 3.3 讨论 | 第59-60页 |
| 3.4 小结 | 第60-61页 |
| 四、脑创伤患者外周血中BDMP的检测 | 第61-76页 |
| 4.1 对象和方法 | 第61-69页 |
| 4.1.1 实验动物、主要仪器 | 第61-62页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第62-63页 |
| 4.1.3 实验方法 | 第63-68页 |
| 4.1.4 统计分析 | 第68-69页 |
| 4.2 结果 | 第69-72页 |
| 4.2.1 流式细胞技术检测TBI患者外周血BDMP | 第69-71页 |
| 4.2.2 western blot验证BDMP | 第71页 |
| 4.2.3 电镜法验证BDMP | 第71-72页 |
| 4.3 讨论 | 第72-75页 |
| 4.4 小结 | 第75-76页 |
| 全文结论 | 第76-77页 |
| 论文创新点 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-100页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第100-101页 |
| 综述 细胞囊泡对神经系统性疾病发生发展以及潜在治疗的作用的研究 | 第101-116页 |
| 参考文献 | 第107-116页 |
| 致谢 | 第116-117页 |
| 个人简历 | 第117页 |
