| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第10-24页 |
| 1.1 引言 | 第10-11页 |
| 1.2 光声成像的介绍 | 第11-13页 |
| 1.2.1 光声成像的发展 | 第11页 |
| 1.2.2 光声成像的机理 | 第11-12页 |
| 1.2.3 光声成像的优势 | 第12页 |
| 1.2.4 常见的光声成像造影剂 | 第12-13页 |
| 1.3 苝酰亚胺的介绍 | 第13-20页 |
| 1.3.1 苝酰亚胺的发展 | 第13页 |
| 1.3.2 苝酰亚胺的性能 | 第13-14页 |
| 1.3.3 苝酰亚胺的改性方法 | 第14页 |
| 1.3.4 改性对苝酰亚胺性能的影响 | 第14-15页 |
| 1.3.5 苝酰亚胺水溶性改性的案例 | 第15-18页 |
| 1.3.6 苝酰亚胺的生物应用 | 第18-20页 |
| 1.4 苝酰亚胺光声成像造影剂的介绍 | 第20-22页 |
| 1.5 本论文选题设计思路及创新点 | 第22-24页 |
| 第二章 苝酰亚胺螯合四氧化三铁双模式成像造影剂的制备 | 第24-42页 |
| 2.1 引言 | 第24-25页 |
| 2.2 实验部分 | 第25-31页 |
| 2.2.1 原料与试剂 | 第25-26页 |
| 2.2.2 实验仪器与操作方法 | 第26页 |
| 2.2.3 目标产物及合成路线 | 第26-29页 |
| 2.2.4 化合物的制备 | 第29-31页 |
| 2.3 结果分析 | 第31-41页 |
| 2.3.1 PDI-PEG500-PMAA的合成与表征 | 第31-35页 |
| 2.3.2 APPA-Fe_3O_4的合成与表征 | 第35-38页 |
| 2.3.3 APPA-Fe_3O_4@PDI-PEG500-PMAA的合成与表征 | 第38-41页 |
| 2.4 本章小结 | 第41-42页 |
| 第三章 苝酰亚胺螯合四氧化三铁双模式成像造影剂的表征 | 第42-52页 |
| 3.1 引言 | 第42页 |
| 3.2 实验部分 | 第42-43页 |
| 3.2.1 细胞毒性实验 | 第42页 |
| 3.2.2 光声成像实验 | 第42-43页 |
| 3.2.3 磁共振成像实验 | 第43页 |
| 3.2.4 光热效应实验 | 第43页 |
| 3.3 结果分析 | 第43-49页 |
| 3.3.1 APPA-Fe_3O_4@PDI-PEG500-PMAA的细胞毒性分析 | 第43-44页 |
| 3.3.2 APPA-Fe_3O_4@PDI-PEG500-PMAA的体外光声成像分析 | 第44-45页 |
| 3.3.3 APPA-Fe_3O_4@PDI-PEG500-PMAA的体内光声成像分析 | 第45-47页 |
| 3.3.4 APPA-Fe_3O_4@PDI-PEG500-PMAA的体外磁共振成像分析 | 第47-48页 |
| 3.3.5 APPA-Fe_3O_4@PDI-PEG500-PMAA的光热效应分析 | 第48-49页 |
| 3.4 本章小结 | 第49-52页 |
| 第四章 对早期血栓靶向的苝酰亚胺光声造影剂的制备 | 第52-68页 |
| 4.1 引言 | 第52-54页 |
| 4.2 实验部分 | 第54-57页 |
| 4.2.1 原料与试剂 | 第54页 |
| 4.2.2 实验仪器与操作方法 | 第54-55页 |
| 4.2.3 目标产物及合成路线 | 第55-56页 |
| 4.2.4 化合物的制备 | 第56-57页 |
| 4.3 结果分析 | 第57-66页 |
| 4.3.1 c RGD-PDI NPs的结构分析 | 第57-62页 |
| 4.3.2 c RGD-PDI NPs的光物理性质分析 | 第62-63页 |
| 4.3.3 c RGD-PDI NPs的稳定性分析 | 第63-65页 |
| 4.3.4 c RAD-PDI NPs的结构分析 | 第65-66页 |
| 4.4 本章小结 | 第66-68页 |
| 第五章 总结与展望 | 第68-70页 |
| 5.1 总结 | 第68-69页 |
| 5.2 展望 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-75页 |
| 附录1 部分化合物的NMR | 第75-79页 |
| 附录2 攻读硕士学位期间撰写的论文 | 第79-80页 |
| 附录3 攻读硕士学位期间参加的科研项目 | 第80-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
