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调控HO-1表达的转录因子的鉴定及其在PRRSV感染中的作用研究

摘要第5-7页
ABSTRACT第7-8页
第一章 文献综述第12-20页
    1.1 猪繁殖与呼吸综合征及其病原的研究进展第12-17页
        1.1.1 PRRSV病原学特点第12-13页
        1.1.2 PRRSV生物学特性第13页
        1.1.3 PRRSV分子生物学特点第13-14页
        1.1.4 PRRSV非结构蛋白第14页
        1.1.5 PRRSV结构蛋白第14-15页
        1.1.6 病毒的增殖特性第15页
        1.1.7 流行病学第15-16页
        1.1.8 抗体依赖性增强作用第16-17页
    1.2 血红素加氧酶1的研究进展第17-20页
        1.2.1 HO-1(血红素加氧酶 1)的生物学特点第17-18页
        1.2.2 HO-1 与病原感染发生发展关系第18页
        1.2.3 HO-1 基因表达调控的研究现状第18-20页
第二章 猪HO-1 启动子区的克隆、鉴定与初步分析第20-36页
    2.1 试验材料第20-21页
        2.1.1 试验试剂第20页
        2.1.2 试验设备和仪器第20-21页
    2.2 试验方法第21-28页
        2.2.1 猪HO-1 启动子区的预测及其引物设计第21页
        2.2.2 PAM细胞的培养及其基因组的提取第21-22页
        2.2.3 LA taq酶PCR扩增HO-1 启动子区第22-23页
        2.2.4 PCR产物胶回收第23-24页
        2.2.5 pGL4.10空载体分步酶切及酶切产物胶回收第24-25页
        2.2.6 双酶切产物胶回收第25页
        2.2.7 Infusion技术同源重组第25-26页
        2.2.8 连接产物的转化第26页
        2.2.9 阳性重组质粒pGL4.10-5′UTR的鉴定与保存第26-28页
    2.3 试验结果第28-35页
        2.3.1 猪HO-1 启动子区的预测及其引物设计第28-29页
        2.3.2 LA taq酶PCR扩增HO-1 启动子区第29-30页
        2.3.3 pGL4.10空载体分步酶切及酶切产物胶回收第30页
        2.3.4 菌液PCR鉴定第30页
        2.3.5 双酶切鉴定第30-31页
        2.3.6 猪HO-1 启动子区测序结果第31-34页
        2.3.7 猪HO-1 启动子区荧光素酶活性检测第34-35页
    2.4 分析及讨论第35-36页
第三章 猪HO-1 核心启动子区域的鉴定第36-47页
    3.1 试验材料第36页
        3.1.1 试验试剂第36页
        3.1.2 试验设备和仪器第36页
    3.2 试验方法第36-41页
        3.2.1 猪HO-1 启动子区第一次顺序截短荧光素酶报告载体的构建第36-39页
        3.2.2 双荧光素酶活性检测第39-40页
        3.2.3 猪HO-1 启动子区第二次顺序截断荧光素酶报告载体的构建第40页
        3.2.4 猪HO-1 启动子区第三次顺序截断荧光素酶报告载体的构建第40-41页
        3.2.5 转录因子预测第41页
    3.3 试验结果第41-46页
        3.3.1 猪HO-1 启动子区第一次顺序截断荧光素酶报告载体的构建第41-44页
        3.3.2 猪HO-1 启动子区第二次顺序截断荧光素酶报告载体的构建第44-45页
        3.3.3 猪HO-1 启动子区第三次顺序截断荧光素酶报告载体的构建第45-46页
    3.4 讨论与分析第46-47页
第四章 关键转录因子的预测分析和NRF2的鉴定第47-54页
    4.1 试验材料第47页
        4.1.1 试验试剂第47页
        4.1.2 试验设备和仪器第47页
    4.2 试验方法第47-50页
        4.2.1 软件预测第47页
        4.2.2 关键转录因子突变荧光素酶报告载体重组质粒的构建第47-50页
    4.3 试验结果第50-52页
        4.3.1 转录因子结合位点预测分析第50-51页
        4.3.2 突变增强子区荧光素酶活性检测第51-52页
    4.4 分析及讨论第52-54页
第五章 转录因子NRF2在HO-1 调控PRRSV感染过程中的作用初探第54-61页
    5.1 试验材料第54-56页
        5.1.1 细胞、抗体及PRRSV毒株第54页
        5.1.2 试验设备和仪器第54页
        5.1.3 试验用主要试剂第54-55页
        5.1.4 细胞用主要试剂及其配制第55页
        5.1.5 分子实验用主要试剂及其配制第55-56页
    5.2 试验方法第56-59页
        5.2.1 tBHQ诱导Nrf2调控HO-1 的转录表达第56-58页
        5.2.2 Nrf2调控HO-1 抵抗PRRSV感染第58-59页
    5.3 试验结果第59-60页
        5.3.1 tBHQ处理不同时间和浓度对Nrf2和HO-1 的影响第59页
        5.3.2 Nrf2调控HO-1 抵抗PRRSV感染第59-60页
    5.4 分析与讨论第60-61页
结论第61-62页
参考文献第62-65页
缩略 词第65-66页
致谢第66-67页
作者简介第67页

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