首页--农业科学论文--植物保护论文--病虫害及其防治论文--植物病害及其防治论文--侵(传)染性病害论文

丁香假单胞菌极毛蛋白HrpA的克隆表达与单链抗体的制备

摘要第1-9页
Abstract第9-10页
英文缩写表第10-11页
1 综述第11-18页
 引言第11页
   ·植物病原菌第11-14页
     ·植物病原菌的Ⅲ型分泌系统第11-12页
     ·Hrp 基因簇第12-13页
     ·Hrp 极毛与HrpA 蛋白第13-14页
     ·Hrp 基因的诱导表达和调控第14页
   ·植物的抗病性第14-15页
     ·病原菌的无毒基因第14-15页
     ·植物的抗病基因第15页
   ·基因工程抗体技术第15-17页
     ·单链抗体第15-16页
     ·噬菌体展示技术第16页
     ·植物抗体工程第16-17页
   ·本研究目的意义第17-18页
2 丁香假单胞菌极毛蛋白HrpA 的克隆表达与鉴定第18-39页
 引言第18页
   ·实验材料第18-20页
     ·菌株与载体第18-19页
     ·主要试剂第19页
     ·主要仪器第19-20页
     ·培养基第20页
   ·实验方法第20-29页
     ·引物设计与合成第20-21页
     ·P. syringae pv. tomato DC3000 基因组的提取第21-22页
     ·PCR 扩增HrpA 基因第22页
     ·表达载体pET32a(+)-HrpA 的构建第22-24页
       ·pET32a(+)质粒的提取第22-23页
       ·目的基因与质粒的酶切第23-24页
       ·目的片段与载体的连接第24页
     ·E.coli DH5α感受态细胞的制备第24-25页
     ·转化实验第25页
     ·重组质粒的筛选与验证第25页
     ·菌株的测序第25-26页
     ·融合蛋白的诱导表达第26-27页
       ·质粒提取与表达宿主E.coli BL21 的转化第26页
       ·IPTG 诱导表达第26页
       ·SDS-PAGE 分析第26-27页
     ·融合蛋白的大量纯化第27-28页
     ·表达载体pET28a(+)-HrpA 的构建以及目的蛋白的诱导纯化第28页
     ·蛋白质的浓度测定第28-29页
   ·结果与分析第29-37页
     ·P. syringae pv. tomato DC3000 基因组的提取第29页
     ·PCR 扩增目的基因第29-30页
     ·表达载体pET32a(+)-HrpA 的构建第30-32页
     ·表达载体pET28a(+)-HrpA 的构建第32-33页
     ·测序结果第33-34页
     ·融合蛋白的表达和纯化第34-35页
     ·蛋白浓度测定第35-37页
   ·讨论第37-38页
     ·关于HrpA 基因的引物设计第37页
     ·表达载体pET32a(+)-HrpA 的构建过程第37页
     ·融合蛋白诱导表达与纯化第37-38页
   ·结论第38-39页
3 单链抗体的制备第39-69页
 引言第39-40页
   ·实验材料第40-42页
     ·菌株与载体第40页
     ·主要试剂第40页
     ·主要仪器材料第40-41页
     ·抗体可变区的通用引物第41-42页
     ·培养基第42页
   ·实验方法第42-56页
     ·小鼠的免疫第42-43页
     ·血清效价的测定第43-44页
     ·脾脏总RNA 的提取第44页
     ·cDNA 的反转录合成(RT-PCR)第44-45页
     ·重链基因可变区(VH)的扩增第45页
     ·轻链基因可变区(VL)的扩增第45-46页
     ·scFv 的组装与扩增第46-47页
     ·基因(scFv)与载体(pCANTAB 5E)的酶切第47-48页
     ·基因(scFv)与载体(pCANTAB 5E)的连接第48页
     ·单链抗体原始库菌株的建立第48-50页
       ·E.coli TG1 电转感受态细胞的制备第48-49页
       ·电击转化第49-50页
     ·噬菌体抗体初级库的制备第50页
     ·抗体初级库的库容量测定第50-51页
     ·噬菌体抗体库的富集淘选第51-52页
     ·特异性的单链抗体的获得第52-53页
       ·噬菌体抗体准备阶段第52页
       ·ELISA 方法的检测阶段第52-53页
     ·阳性克隆的酶切与PCR 验证第53页
     ·阳性克隆的ELISA 检测第53页
     ·菌株的测序第53-54页
     ·单链抗体的可溶性表达第54-55页
       ·宿主菌E.coli HB2151 的侵染阶段第54页
       ·抗体的可溶性表达阶段第54-55页
     ·抗体特异性与活性检测第55-56页
       ·ELISA 方法的检测抗体特异性第55页
       ·Far western blot 检测抗体活性第55-56页
   ·结果与分析第56-66页
     ·血清效价的测定第56-57页
     ·脾脏总RNA 的提取第57页
     ·重链基因可变区(VH)的扩增第57-58页
     ·轻链基因可变区(VL)的扩增第58页
     ·scFv 的组装与扩增第58-59页
     ·单链抗体原始库菌株的建立第59页
     ·噬菌体单链抗体库富集淘选第59-60页
     ·特异性的单链抗体的获得第60-61页
     ·scFv 的PCR 和酶切验证第61-62页
     ·scFv 的ELISA 检测第62-63页
     ·scFv 的测序结果与分析第63页
     ·scFv 的可溶性表达第63-64页
     ·ELISA 方法检测抗体特异性第64-65页
     ·Far western blot 检测抗体活性第65-66页
   ·讨论第66-68页
     ·BalB/C 小鼠的免疫第66页
     ·脾脏总RNA 的提取第66页
     ·scFv 的组装与扩增第66-67页
     ·电击转化法第67页
     ·噬菌体抗体库富集淘选过程第67页
     ·特异性的单链抗体的获得第67页
     ·Far western blot 检测抗体活性第67-68页
   ·结论第68-69页
参考文献第69-75页
附录第75-78页
致谢第78页

论文共78页,点击 下载论文
上一篇:水稻条纹病毒编码蛋白在Sf9细胞中的表达与定位
下一篇:西花蓟马对寄主植物的适应特性研究