| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 本文缩略词 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-26页 |
| 1.1 恶性肿瘤的转移及其分子生物学机制 | 第13-19页 |
| 1.1.1 细胞粘附与肿瘤转移 | 第13-16页 |
| 1.1.2 细胞外基质降解与肿瘤转移 | 第16-18页 |
| 1.1.3 血管生成与肿瘤转移 | 第18-19页 |
| 1.2 抗肿瘤转移药物研究进展 | 第19-22页 |
| 1.2.1 抗血管生成药物 | 第19-21页 |
| 1.2.2 MMPs抑制剂 | 第21页 |
| 1.2.3 细胞黏附抑制剂 | 第21-22页 |
| 1.3 活性多糖与肿瘤转移 | 第22-25页 |
| 1.4 课题研究背景及意义 | 第25-26页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第26-36页 |
| 2.1 实验材料与试剂 | 第26-27页 |
| 2.2 实验仪器 | 第27-29页 |
| 2.3 实验方法 | 第29-36页 |
| 2.3.1 EPS1-1提取、纯化 | 第29页 |
| 2.3.2 肿瘤细胞的培养 | 第29页 |
| 2.3.3 Transwell检测细胞迁移能力 | 第29-30页 |
| 2.3.4 Transwell检测肿瘤细胞侵袭能力 | 第30页 |
| 2.3.5 细胞黏附实验检测CT26黏附能力 | 第30页 |
| 2.3.6 体外内皮细胞管形成实验 | 第30页 |
| 2.3.7 明胶酶谱分析CT26中MMP-2及MMP-9的表达 | 第30-31页 |
| 2.3.8 qPCR分析CT26转移相关基因的表达 | 第31-32页 |
| 2.3.9 Western-blot分析CT26转移相关蛋白的表达 | 第32-33页 |
| 2.3.10 免疫荧光分析CT26细胞中MMP-9表达及分布 | 第33-34页 |
| 2.3.11 小鼠尾静脉转移模型的构建 | 第34页 |
| 2.3.12 肺指数,肿瘤转移抑制率,脾脏指数,胸腺指数的测定 | 第34页 |
| 2.3.13 小鼠肺组织HE染色病理分析 | 第34页 |
| 2.3.14 qPCR分析小鼠肺组织转移相关基因 | 第34-35页 |
| 2.3.15 Western-blot检测肺组织转移相关蛋白 | 第35页 |
| 2.3.16 CT26荷瘤小鼠肺组织免疫组织化学染色 | 第35页 |
| 2.3.17 ELISA测定IL-2释放量 | 第35页 |
| 2.3.18 数据统计 | 第35-36页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第36-51页 |
| 3.1 EPS1-1对细胞迁移的影响 | 第36-37页 |
| 3.2 EPS1-1对CT26细胞侵袭的影响 | 第37-39页 |
| 3.3 EPS1-1对CT26细胞黏附的影响 | 第39页 |
| 3.4 EPS1-1对体外脐静脉内皮细胞管形成的影响 | 第39-40页 |
| 3.5 EPS1-1抑制CT26细胞内MMP-2和MMP-9活性 | 第40-41页 |
| 3.6 EPS1-1对细胞内转移相关基因表达的影响 | 第41-42页 |
| 3.7 EPS1-1对CT26细胞中转移相关蛋白表达的影响 | 第42-43页 |
| 3.8 MMP-9免疫荧光染色分析 | 第43-44页 |
| 3.9 EPS1-1对黑色素瘤细胞B16F10肺转移的抑制作用 | 第44页 |
| 3.10 C57BL/6J小鼠肺组织HE染色 | 第44-45页 |
| 3.11 EPS1-1对CT26血行性肺转移的抑制作用 | 第45-46页 |
| 3.12 BaLb/c小鼠肺组织HE染色 | 第46页 |
| 3.13 EPS1-1影响CT26荷瘤小鼠肺组织中转移相关基因的表达 | 第46-47页 |
| 3.14 EPS1-1影响CT26荷瘤小鼠肺组织中转移相关蛋白的表达 | 第47-48页 |
| 3.15 CT26荷瘤小鼠肺组织CD31免疫组织化学染色分析 | 第48-49页 |
| 3.16 BaLb/c小鼠脾脏指数及胸腺指数测定、 | 第49-50页 |
| 3.17 ELISA測定IL-2释放量 | 第50-51页 |
| 第四章 讨论 | 第51-56页 |
| 4.1 黑根霉胞外多糖对肿瘤转移的抑制作用 | 第51-52页 |
| 4.2 EPS1-1抗肿瘤转移机制的初步分析 | 第52-56页 |
| 第五章 小结 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第68页 |
