| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 1 骨髓间充质干细胞培养及其促进神经修复的研究简介 | 第14-31页 |
| ·概述 | 第14页 |
| ·BMSCs生物学性能简介 | 第14-22页 |
| ·BMSCs的发现、定义 | 第14-15页 |
| ·BMSCs的生物学特性 | 第15-16页 |
| ·BMSCs的主要表面标志 | 第16页 |
| ·BMSCs的多向分化潜能 | 第16-18页 |
| ·BMSCs的旁分泌功能 | 第18-19页 |
| ·BMSCs体外扩增研究进展 | 第19-22页 |
| ·BMSCs促进神经修复的相关研究 | 第22-26页 |
| ·BMSCs移植治疗CNS疾病及存在的问题 | 第22-23页 |
| ·BMSCs促进神经修复的作用机理 | 第23-24页 |
| ·BMSCs与NSCs相互作用的研究 | 第24-26页 |
| ·帕金森病细胞模型 | 第26-28页 |
| ·细胞凋亡与帕金森病 | 第26-27页 |
| ·细胞凋亡模型建立方法 | 第27-28页 |
| ·本文的选题依据和研究内容 | 第28-31页 |
| 2 骨髓间充质干细胞的获取及体外三维动态培养与扩增 | 第31-60页 |
| ·引言 | 第31-32页 |
| ·实验仪器与材料 | 第32-37页 |
| ·实验仪器与设备 | 第32-34页 |
| ·药品与试剂 | 第34-35页 |
| ·溶液与试剂的配制 | 第35-37页 |
| ·实验方法 | 第37-43页 |
| ·BMSCs的分离与培养 | 第37-38页 |
| ·细胞形态学观察 | 第38页 |
| ·胶原凝胶的微观结构 | 第38页 |
| ·BMSCs的准备 | 第38-39页 |
| ·BMSCs在ALHFMB内三维动态扩增 | 第39页 |
| ·细胞增殖 | 第39页 |
| ·代谢分析 | 第39-40页 |
| ·ALHFMB内氧、二氧化碳分压及pH值测定 | 第40页 |
| ·支架内细胞活性检测 | 第40-41页 |
| ·支架内细胞形态观察 | 第41-42页 |
| ·干细胞表面特异性标记检测 | 第42页 |
| ·多向分化潜能的检测 | 第42-43页 |
| ·统计学分析 | 第43页 |
| ·结果 | 第43-55页 |
| ·原代及传代培养的BMSCs生长形态 | 第43-45页 |
| ·胶原凝胶的微观结构 | 第45-46页 |
| ·细胞增殖 | 第46-47页 |
| ·支架内细胞的代谢 | 第47-48页 |
| ·ALHFMB内氧、二氧化碳分压及pH值 | 第48-49页 |
| ·支架内细胞活性 | 第49-51页 |
| ·支架内细胞的形态 | 第51-52页 |
| ·细胞表面特异性蛋白的表达 | 第52-54页 |
| ·扩增细胞的多向分化潜能 | 第54-55页 |
| ·讨论 | 第55-59页 |
| ·小结 | 第59-60页 |
| 3 BMSCs与三维条件下NSCs相互作用的研究 | 第60-97页 |
| ·引言 | 第60-61页 |
| ·实验仪器与材料 | 第61-64页 |
| ·实验仪器与设备 | 第61页 |
| ·药品与试剂 | 第61-62页 |
| ·溶液与试剂的配制 | 第62-64页 |
| ·实验方法 | 第64-70页 |
| ·BMSCs的分离、培养、扩增及鉴定 | 第64页 |
| ·NSCs的分离与培养 | 第64-65页 |
| ·NSCs诱导分化及免疫组织化学鉴定 | 第65-66页 |
| ·海藻酸钙胶珠的制备 | 第66-67页 |
| ·NSCs微囊化培养 | 第67页 |
| ·BMSCs与NSCs共培养 | 第67-68页 |
| ·增殖共培养后BMSCs对NSCs的影响 | 第68-69页 |
| ·分化共培养后NSCs的流式细胞仪检测 | 第69页 |
| ·增殖共培养后NSCs对BMSCs的影响 | 第69-70页 |
| ·分化共培养后NSCs对BMSCs的影响 | 第70页 |
| ·统计学分析 | 第70页 |
| ·结果 | 第70-93页 |
| ·NSCs的原代及传代培养 | 第70-71页 |
| ·NSCs免疫组织化学及诱导分化鉴定 | 第71-72页 |
| ·适宜NSCs生长的海藻酸钙胶珠 | 第72-75页 |
| ·NSCs微囊化培养 | 第75-76页 |
| ·增殖共培养后BMSCs对NSCs的影响 | 第76-82页 |
| ·分化共培养后BMSCs对NSCs的影响 | 第82-85页 |
| ·增殖共培养后NSCs对BMSCs的影响 | 第85-89页 |
| ·分化共培养后NSCs对BMSCs的影响 | 第89-93页 |
| ·讨论 | 第93-96页 |
| ·小结 | 第96-97页 |
| 4 BMSCs在NSCs保护去血清诱导PC12细胞凋亡中的作用 | 第97-117页 |
| ·引言 | 第97页 |
| ·实验仪器与材料 | 第97-98页 |
| ·实验仪器与设备 | 第97页 |
| ·药品与试剂 | 第97-98页 |
| ·药品与试剂的配制 | 第98页 |
| ·实验方法 | 第98-102页 |
| ·BMSCs的分离、培养、扩增及鉴定 | 第98页 |
| ·NSCs的分离、培养与鉴定 | 第98页 |
| ·PC12细胞的培养及去血清诱导凋亡模型的建立 | 第98-99页 |
| ·海藻酸钙胶珠与PC12细胞的生物相容性 | 第99页 |
| ·NSCs对去血清诱导PC12细胞凋亡的保护作用 | 第99-100页 |
| ·BMSCs在NSCs保护去血清诱导PC 12细胞凋亡中的作用 | 第100页 |
| ·Hoechst 33342染色分析 | 第100-101页 |
| ·流式细胞仪分析PC12细胞凋亡率 | 第101页 |
| ·流式细胞仪分析PC12细胞周期 | 第101页 |
| ·培养基中GDNF浓度的测定 | 第101页 |
| ·统计学分析 | 第101-102页 |
| ·结果 | 第102-114页 |
| ·PC12细胞的培养及去血清诱导凋亡模型 | 第102-103页 |
| ·海藻酸钙胶珠与PC12细胞的生物相容性 | 第103-104页 |
| ·单独NSCs对去血清诱导凋亡的PC12细胞存活率的作用 | 第104-106页 |
| ·BMSCs与NSCs对诱导凋亡的PC12细胞存活率的共同作用 | 第106-107页 |
| ·Hoechst 33342染色分析 | 第107-109页 |
| ·流式细胞仪分析PC12细胞凋亡率 | 第109-111页 |
| ·流式细胞仪分析PC12细胞周期 | 第111-113页 |
| ·不同培养条件下培养基中GDNF浓度的比较 | 第113-114页 |
| ·讨论 | 第114-116页 |
| ·小结 | 第116-117页 |
| 结论 | 第117-119页 |
| 工作展望 | 第119-120页 |
| 创新点摘要 | 第120-121页 |
| 参考文献 | 第121-131页 |
| 附录A 英文缩略词 | 第131-132页 |
| 作者简介 | 第132-135页 |
| 致谢 | 第135-137页 |
