摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-13页 |
引言 | 第13-14页 |
1. 文献综述 | 第14-38页 |
·帕金森综合症概述 | 第14-19页 |
·PD的致病机制 | 第14-16页 |
·PD的预防与治疗措施 | 第16-18页 |
·PD模型的构建 | 第18-19页 |
·脑缺血缺氧损伤的概述 | 第19-23页 |
·脑缺血的致病机制 | 第19-21页 |
·脑缺血损伤模型的构建 | 第21-23页 |
·星形胶质细胞概述 | 第23-29页 |
·星形胶质细胞的特性 | 第23-25页 |
·星形胶质细胞的生物学功能 | 第25-26页 |
·星形胶质细胞与神经元之间的相互作用 | 第26-28页 |
·星形胶质细胞与神经元之间的谷氨酸-谷氨酰胺代谢偶联 | 第28页 |
·星形胶质细胞的激活与炎症反应 | 第28-29页 |
·NAD、NAM和PBEF的研究概况 | 第29-33页 |
·NAD的合成与代谢过程 | 第29-31页 |
·PBEF的生物学功能 | 第31-33页 |
·梓醇的研究概况 | 第33-35页 |
·梓醇的理化性质 | 第33页 |
·梓醇的药理活性 | 第33-35页 |
·选题依据 | 第35-38页 |
2. 梓醇在纯星形胶质细胞培养体系中的神经保护作用 | 第38-63页 |
·实验材料与设备 | 第40-41页 |
·实验动物 | 第40页 |
·主要试剂 | 第40页 |
·主要仪器 | 第40-41页 |
·实验方法 | 第41-46页 |
·小鼠皮层纯星形胶质细胞培养 | 第41页 |
·免疫细胞化学染色 | 第41页 |
·细胞活力测定 | 第41-42页 |
·ROS含量测定 | 第42页 |
·GSx与GSSG含量测定 | 第42页 |
·GR活性测定 | 第42-43页 |
·GSH-Px活性测定 | 第43页 |
·CAT活性测定 | 第43页 |
·NO含量和iNOS活性测定 | 第43-44页 |
·反转录聚合酶链式反应(RT-PCR) | 第44-46页 |
·NF-KB表达的测定 | 第46页 |
·统计学分析方法 | 第46页 |
·实验结果 | 第46-58页 |
·梓醇对H202诱导的星形胶质细胞氧化应激损伤的保护作用 | 第46-53页 |
·星形胶质细胞的形态学观察 | 第46-47页 |
·H202最佳损伤浓度的筛选 | 第47-48页 |
·梓醇对H202诱导的星形胶质细胞损伤的保护作用 | 第48-49页 |
·梓醇对H202诱导的星形胶质细胞ROS生成的影响 | 第49页 |
·梓醇对星形胶质细胞GSx与GSSG含量的影响 | 第49-50页 |
·梓醇对星形胶质细胞GR、GSH-Px和CAT活性的影响 | 第50-53页 |
·梓醇对LPS+IFN-Y诱导的星形胶质细胞激活的抑制作用 | 第53-58页 |
·梓醇对LPS+IFN-Y诱导的星形胶质细胞激活的形态学影响 | 第53-54页 |
·梓醇对LPS+IFN-Y诱导的星形胶质细胞NO生成和iNOS活性的影响 | 第54-55页 |
·梓醇对LPS+IFN-Y诱导的星形胶质细胞ROS生成的影响 | 第55页 |
·梓醇对LPS+IFN-Y诱导的星形胶质细胞炎症因子表达的影响 | 第55-57页 |
·梓醇对LPS+IFN-Y诱导的星形胶质细胞NF-KB活性的影响 | 第57-58页 |
·讨论 | 第58-61页 |
·小结 | 第61-63页 |
3. 梓醇在中脑纯神经元培养体系中的神经保护作用 | 第63-74页 |
·实验材料与设备 | 第63-64页 |
·实验动物 | 第63页 |
·主要试剂 | 第63-64页 |
·主要仪器 | 第64页 |
·实验方法 | 第64-66页 |
·小鼠中脑纯神经元的培养 | 第64-65页 |
·免疫细胞化学分析 | 第65页 |
·Hoechst 33258染色 | 第65页 |
·流式细胞仪分析凋亡与坏死 | 第65-66页 |
·NO含量测定 | 第66页 |
·免疫印记(Western Blotting) | 第66页 |
·统计学分析方法 | 第66页 |
·实验结果 | 第66-71页 |
·梓醇对鱼藤酮诱导的中脑多巴胺能神经元损伤的保护作用 | 第66-68页 |
·梓醇对鱼藤酮诱导的中脑神经元凋亡与坏死的影响 | 第68-69页 |
·梓醇对鱼藤酮诱导的中脑神经元NO生成和iNOS表达的影响 | 第69-70页 |
·梓醇对鱼藤酮介导的JNK和ERK信号通路的调控 | 第70-71页 |
·讨论 | 第71-73页 |
·小结 | 第73-74页 |
4. 梓醇在中脑神经元-星形胶质细胞混合培养体系中的神经保护作用 | 第74-85页 |
·实验材料及设备 | 第75-76页 |
·实验动物 | 第75页 |
·主要试剂 | 第75页 |
·主要设备 | 第75-76页 |
·实验方法 | 第76-79页 |
·小鼠中脑神经元.星形胶质细胞混合培养 | 第76页 |
·细胞活力与LDH的测定 | 第76页 |
·细胞线粒体提取 | 第76-77页 |
·ROS含量测定 | 第77页 |
·线粒体膜电位(MMP)的测定 | 第77页 |
·线粒体复合物I活性测定 | 第77页 |
·线粒体通透性转运孔(MPTp)开放度的测定 | 第77-78页 |
·细胞内钙离子(Ca2+)测定 | 第78页 |
·统计学分析方法 | 第78-79页 |
·实验结果 | 第79-82页 |
·梓醇对MPP+诱导的中脑神经元损伤的的保护作用 | 第79页 |
·梓醇对MPP+诱导的线粒体功能紊乱的影响 | 第79-80页 |
·梓醇对MPP+诱导的ROS生成和Ca2+超载的影响 | 第80-82页 |
·梓醇对MPP+诱导的MPTp开放的影响 | 第82页 |
·讨论 | 第82-84页 |
·小结 | 第84-85页 |
5. PBEF在脑缺血缺氧损伤中的神经保护作用 | 第85-109页 |
·实验材料与设备 | 第86-87页 |
·实验动物 | 第86页 |
·主要试剂 | 第86页 |
·主要仪器 | 第86-87页 |
·实验方法 | 第87-89页 |
·原代皮层神经元的培养以及OGD模型的构建 | 第87页 |
·细胞的存活与死亡测定 | 第87页 |
·免疫细胞化学染色 | 第87-88页 |
·活细胞实时成像测定MMP | 第88页 |
·细胞内NAD+含量测定 | 第88页 |
·细胞内ATP含量测定 | 第88页 |
·细胞转染 | 第88-89页 |
·线粒体生物合成的测定 | 第89页 |
·统计学分析方法 | 第89页 |
·实验结果 | 第89-106页 |
·外源NAD+与NAM对OGD及谷氨酸诱导的神经元损伤的保护作用 | 第89-95页 |
·外源NAD+与NAM对FK866引起的神经元损伤的保护作用 | 第95-96页 |
·FK866加剧OGD诱导的神经元损伤与NAD+耗竭 | 第96-97页 |
·PBEF通过调节NAD+合成削弱神经元损伤 | 第97-101页 |
·PBEF在正常或OGD损伤条件下对细胞ATP水平的影响 | 第101-102页 |
·PBEF在损伤条件下对线粒体生物合成的影响 | 第102-104页 |
·PBEF在谷氨酸兴奋性毒性损伤中对MMP的影响 | 第104-106页 |
·讨论 | 第106-108页 |
·小结 | 第108-109页 |
结论与展望 | 第109-112页 |
结论 | 第109-111页 |
展望 | 第111-112页 |
创新点 | 第112-113页 |
参考文献 | 第113-125页 |
附录 缩略词表 | 第125-128页 |
攻读博士学位期间发表学术论文情况 | 第128-129页 |
致谢 | 第129-130页 |
作者简介 | 第130-131页 |