| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-11页 |
| 主要符号对照表 | 第11-13页 |
| 第1章 引言 | 第13-30页 |
| ·水稻是单子叶植物基因组研究的模式植物 | 第13-14页 |
| ·水稻作为单子叶植物基因组研究的模式植物具有重要现实意义 | 第13页 |
| ·水稻作为单子叶植物基因组研究模式植物的优越性 | 第13-14页 |
| ·T-DNA标签法在水稻功能基因组研究中的应用 | 第14-15页 |
| ·水稻矮化突变体概述 | 第15-17页 |
| ·矮秆基因 | 第15页 |
| ·水稻矮化突变体节间的不同伸长模式 | 第15-17页 |
| ·丙酮酸激酶研究进展 | 第17-22页 |
| ·丙酮酸激酶是糖酵解途径中的关键调控酶 | 第17-18页 |
| ·丙酮酸激酶的分类和亚单位组成 | 第18-19页 |
| ·丙酮酸激酶的理化特性 | 第19页 |
| ·丙酮酸激酶的调控 | 第19页 |
| ·丙酮酸激酶家族 | 第19-20页 |
| ·植物体中丙酮酸激酶生理作用研究进展 | 第20-22页 |
| ·植物激素 | 第22-28页 |
| ·植物激素的概念和种类 | 第22页 |
| ·GA的生理效应和生物合成 | 第22-23页 |
| ·CTK的生理效应和生物合成 | 第23-24页 |
| ·ABA的生理效应和生物合成 | 第24-25页 |
| ·生长素的生理效应和生物合成 | 第25-26页 |
| ·糖酵解途径、丙酮酸激酶与植物激素生物合成的可能关系 | 第26-28页 |
| ·本论文的研究背景、目的和内容 | 第28-30页 |
| ·研究背景 | 第28页 |
| ·研究目的 | 第28-29页 |
| ·研究内容 | 第29-30页 |
| 第2章 突变体ospk1表型分析 | 第30-33页 |
| ·植物材料 | 第30页 |
| ·茎纵切扫描电子显微镜观察 | 第30页 |
| ·结果与讨论 | 第30-33页 |
| ·幼苗期突变表型 | 第30-31页 |
| ·成熟期突变表型 | 第31-33页 |
| 第3章 突变体ospk1遗传分析与互补 | 第33-46页 |
| ·本章引论 | 第33页 |
| ·材料与方法 | 第33-41页 |
| ·植物材料 | 第33-34页 |
| ·水稻基因组DNA的提取方法 | 第34页 |
| ·质粒DNA的小量提取 | 第34-35页 |
| ·T载体转化到大肠杆菌感受态 | 第35页 |
| ·农杆菌EHA105感受态的制备 | 第35-36页 |
| ·农杆菌EHA105感受态的电击转化 | 第36页 |
| ·突变体中T-DNA插入位置的确定 | 第36-37页 |
| ·水稻总RNA的提取（Trizol 法） | 第37页 |
| ·RACE分析OsPK1的5’-和3’-UTR | 第37页 |
| ·定量RT-PCR | 第37-39页 |
| ·农杆菌介导的水稻遗传转化方法 | 第39-40页 |
| ·遗传互补实验 | 第40-41页 |
| ·结果与分析 | 第41-46页 |
| ·突变体ospk1 T-DNA边界的确定 | 第41-43页 |
| ·遗传互补 | 第43-46页 |
| 第4章 OsPK1编码一个在胞质表达的丙酮酸激酶 | 第46-56页 |
| ·材料与方法 | 第46-49页 |
| ·生物信息学分析 | 第46页 |
| ·亚细胞定位 | 第46页 |
| ·OsPK1体外表达和酶活性分析 | 第46-47页 |
| ·定量RT-PCR检测糖酵解/糖异生途径中的酶的表达 | 第47页 |
| ·检测PEP/丙酮酸代谢相关的酶和丙酮酸激酶家族基因的表达 | 第47-49页 |
| ·结果与分析 | 第49-56页 |
| ·OsPK1是一个高度保守的基因 | 第49-52页 |
| ·OsPK1的亚细胞定位 | 第52页 |
| ·OsPK1展示丙酮酸激酶活性 | 第52-53页 |
| ·糖酵解/糖异生途径中的酶的表达在 ospk1 中上调或下调 | 第53-54页 |
| ·RT-PCR检测野生型和突变体中 PEP/丙酮酸代谢相关基因的表达 | 第54-56页 |
| 第5章 OsPK1基因的表达模式分析 | 第56-61页 |
| ·材料与方法 | 第56-58页 |
| ·植物材料 | 第56页 |
| ·定量RT-PCR检测 OsPK1 和 Os12g0145700 在各器官组织的表达 | 第56页 |
| ·构建PROOsPK1:GUS | 第56页 |
| ·GUS 组织化学染色方法 | 第56-57页 |
| ·GUS 染色后制作石蜡切片 | 第57-58页 |
| ·结果与分析 | 第58-61页 |
| ·定量 RT-PCR 检测 OsPK1 在各器官的表达 | 第58页 |
| ·GUS 组织化学染色检测 OsPK1 的表达模式 | 第58页 |
| ·石蜡切片检测 OsPK1 细胞水平的表达 | 第58-61页 |
| 第6章 OsPK1 对植物激素合成和根吸收的影响 | 第61-69页 |
| ·本章引论 | 第61页 |
| ·材料与方法 | 第61-63页 |
| ·植物材料 | 第61页 |
| ·外施赤霉素对叶鞘长度的影响 | 第61-62页 |
| ·植物激素的检测 | 第62页 |
| ·定量 RT-PCR 检测 GA 合成途径中的三个关键调控酶的表达 | 第62页 |
| ·糖的检测 | 第62-63页 |
| ·结果与分析 | 第63-69页 |
| ·ospk1 对外施 GA3是敏感的 | 第63-64页 |
| ·OsPK1 表达降低影响赤霉素和脱落酸的合成及它们之间的平衡 | 第64-66页 |
| ·野生型和突变体中 CTK 和 IAA 的含量分析 | 第66页 |
| ·OsPK1 表达降低影响了糖的合成和运输以及根对外源蔗糖的吸收 | 第66-69页 |
| 第7章 总结和讨论 | 第69-75页 |
| ·总结 | 第69-70页 |
| ·讨论 | 第70-75页 |
| ·ospk1 是第 1 个报道的由丙酮酸激酶突变产生的水稻矮化突变体 | 第70-71页 |
| ·OsPK1 主要在功能性的组织和细胞中表达 | 第71-72页 |
| ·突变体 ospk1 突变表型之间的关联 | 第72页 |
| ·OsPK1 的表达降低引起具生物活性的 GAs 的合成受到抑制，ABA/GA平衡被打破 | 第72-73页 |
| ·突变体根对外源蔗糖的吸收和利用的能力减弱 | 第73-74页 |
| ·OsPK1 表达降低影响到糖的合成、代谢和运输 | 第74页 |
| ·OsPK1 研究展望与问题 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-83页 |
| 致谢 | 第83-85页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第85页 |
