| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第11-23页 |
| 1.1 环境中的多环芳烃 | 第11-15页 |
| 1.1.1 我国PAHs的污染现状 | 第13-14页 |
| 1.1.2 PAHs的去除方法 | 第14-15页 |
| 1.1.2.1 生物降解法 | 第14-15页 |
| 1.1.2.2 光催化降解 | 第15页 |
| 1.2 模式PAH菲研究现状 | 第15-18页 |
| 1.2.1 菲的结构及化学特性 | 第15-16页 |
| 1.2.2 环境条件对PHE降解的影响 | 第16页 |
| 1.2.3 表面活性剂的影响 | 第16-17页 |
| 1.2.4 菲的代谢途径 | 第17-18页 |
| 1.3 重金属污染的现状 | 第18-21页 |
| 1.3.1 重金属的来源 | 第19页 |
| 1.3.2 国内外重金属污染土壤现状 | 第19-20页 |
| 1.3.3 重金属的毒性及去除方式 | 第20-21页 |
| 1.3.3.1 重金属的毒性 | 第20页 |
| 1.3.3.2 重金属的去除方式 | 第20-21页 |
| 1.4 混合污染物污染环境的修复 | 第21-22页 |
| 1.4.1 PAHs和重金属共同污染的生物修复现状 | 第21页 |
| 1.4.2 重金属对PAHs生物降解的影响 | 第21-22页 |
| 1.5 本论文的研究内容与意义 | 第22-23页 |
| 第二章 菲降解菌的分类、鉴定、富集和降解特性研究 | 第23-31页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第23-26页 |
| 2.1.1 样品、化学试剂、供试培养基 | 第23页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第23-24页 |
| 2.1.3 菲降解菌的筛选 | 第24页 |
| 2.1.4 菲降解菌的形态学与生理生化鉴定 | 第24-25页 |
| 2.1.4.1 菌株的形态观察 | 第24-25页 |
| 2.1.4.2 菌株的生理生化鉴定 | 第25页 |
| 2.1.5 菲降解菌16s rRNA基因测序分析 | 第25页 |
| 2.1.6 菲降解菌的生长曲线与降解实验测定 | 第25-26页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第26-30页 |
| 2.2.1 菌株FM-2的形态特征 | 第26-27页 |
| 2.2.2 菌株FM-2的16s rRNA基因序列和系统发育进化树分析 | 第27-28页 |
| 2.2.3 菌株FM-2生长曲线测定 | 第28-29页 |
| 2.2.4 菌株FM-2的菲降解实验测定 | 第29-30页 |
| 2.3 本章小结 | 第30-31页 |
| 第三章 菌株FM-2的菲降解实验优化及代谢途径分析 | 第31-38页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第31-32页 |
| 3.1.1 供试菌株、化学试剂与实验仪器 | 第31页 |
| 3.1.2 培养基制备与菌悬液培养 | 第31页 |
| 3.1.3 不同培养时间、温度、盐度和pH对菌株FM-2降解菲的影响 | 第31-32页 |
| 3.1.4 菲代谢中间产物分析 | 第32页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第32-36页 |
| 3.2.1 培养时间、温度、盐度和p H对菌株FM-2降解菲的影响 | 第32-35页 |
| 3.2.2 菌株FM-2降解菲的代谢途径分析 | 第35-36页 |
| 3.3 本章小结 | 第36-38页 |
| 第四章 鼠李糖脂对菌株降解菲及细胞表面特征的影响 | 第38-47页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第38-40页 |
| 4.1.1 供试菌株、化学试剂与实验仪器 | 第38页 |
| 4.1.2 培养基的制备与菌悬液的培养 | 第38页 |
| 4.1.3 鼠李糖脂的临界胶束浓度(CMC)测定 | 第38-39页 |
| 4.1.4 鼠李糖脂对菲的增溶实验 | 第39页 |
| 4.1.5 鼠李糖脂作用下菌株降菲实验 | 第39页 |
| 4.1.6 鼠李糖脂作用下细胞表面疏水性(CSH)及脂多糖(LPS)的变化 | 第39-40页 |
| 4.1.6.1 CSH的测定 | 第39-40页 |
| 4.1.6.2 LPS的测定 | 第40页 |
| 4.1.7 鼠李糖脂作用下细胞表面Zeta电位的变化 | 第40页 |
| 4.2 实验结果与讨论 | 第40-46页 |
| 4.2.1 鼠李糖脂的CMC | 第40-41页 |
| 4.2.2 鼠李糖脂对菲增溶效果的影响 | 第41-42页 |
| 4.2.3 鼠李糖脂对菌株降菲效率的影响 | 第42-43页 |
| 4.2.4 鼠李糖脂对细胞表面疏水性(CSH)及脂多糖(LPS)的影响 | 第43-45页 |
| 4.2.5 鼠李糖脂对细胞表面Zeta电位的影响 | 第45-46页 |
| 4.3 本章小结 | 第46-47页 |
| 第五章 菌株FM-2生物修复菲-重金属双重污染土壤的初步探究 | 第47-61页 |
| 5.1 实验材料与方法 | 第47-50页 |
| 5.1.1 供试菌株、化学试剂与实验仪器 | 第47页 |
| 5.1.2 LMM中重金属对菲降解的影响 | 第47-48页 |
| 5.1.3 LMM中菌株FM-2对重金属的生物吸附分析 | 第48页 |
| 5.1.3.1 电感耦合等离子体发射光谱仪(ICP-OES)分析 | 第48页 |
| 5.1.3.2 扫描电镜-能谱仪(SEM-EDS)分析 | 第48页 |
| 5.1.3.3 傅里叶变换红外光谱仪(FTIR)分析 | 第48页 |
| 5.1.4 菲与Zn(Ⅱ)或Cd(Ⅱ)双重污染土壤的生物修复 | 第48-50页 |
| 5.1.4.1 实验土壤的处理 | 第49页 |
| 5.1.4.2 土壤中菲降解率测定 | 第49-50页 |
| 5.2 实验结果与分析 | 第50-60页 |
| 5.2.1 LMM中重金属Zn~(2+)、Cd~(2+)、Pb~(2+)对菲降解的影响 | 第50-53页 |
| 5.2.2 ICP-OES结果 | 第53-55页 |
| 5.2.3 SEM结果 | 第55页 |
| 5.2.4 FTIR结果 | 第55-58页 |
| 5.2.5 土壤中菲降解情况分析 | 第58-60页 |
| 5.3 本章小结 | 第60-61页 |
| 第六章 结论 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-74页 |
| 发表论文和科研情况说明 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75页 |
