| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-41页 |
| 1.1 金葡菌概述 | 第12-16页 |
| 1.1.1 引言 | 第12页 |
| 1.1.2 金葡菌的基本生物学特征 | 第12页 |
| 1.1.3 金葡菌的分布 | 第12-13页 |
| 1.1.4 金葡菌耐药性的产生及传播 | 第13-16页 |
| 1.2 金葡菌与宿主的免疫反应 | 第16-21页 |
| 1.2.1 固有免疫应答 | 第16-20页 |
| 1.2.2 适应性免疫应答 | 第20-21页 |
| 1.3 金葡菌生物被膜及细菌沉聚 | 第21-29页 |
| 1.3.1 金葡菌生物被膜 | 第21-24页 |
| 1.3.2 金葡菌的聚集和结块形成 | 第24-28页 |
| 1.3.3 生物被膜及凝集结块与抗生素耐药性 | 第28-29页 |
| 1.4 金葡菌毒力调控因子 | 第29-39页 |
| 1.4.1 sigma因子 | 第29页 |
| 1.4.2 二元信号系统 | 第29-30页 |
| 1.4.3 群体感应系统 | 第30-32页 |
| 1.4.4 SarA调控蛋白家族 | 第32-35页 |
| 1.4.5 SpoVG | 第35-36页 |
| 1.4.6 金葡菌蛋白质磷酸化修饰 | 第36-39页 |
| 1.5 本课题的研究内容及研究目的 | 第39-41页 |
| 1.5.1 本课题主要背景 | 第39-40页 |
| 1.5.2 本课题主要研究内容及目的 | 第40-41页 |
| 第二章 实验材料及方法 | 第41-59页 |
| 2.1 实验材料 | 第41-46页 |
| 2.1.1 本实验所用菌株 | 第41-42页 |
| 2.1.2 本实验所用质粒 | 第42页 |
| 2.1.3 本实验所用引物 | 第42-44页 |
| 2.1.4 本实验所用培养基及试剂 | 第44-45页 |
| 2.1.5 实验中所使用的仪器 | 第45-46页 |
| 2.2 实验方法 | 第46-59页 |
| 2.2.1 细菌基础实验操作 | 第46-47页 |
| 2.2.2 DNA相关实验操作 | 第47-49页 |
| 2.2.3 RNA相关实验操作 | 第49-52页 |
| 2.2.4 蛋白质相关实验操作 | 第52-53页 |
| 2.2.5 微生物相关实验操作 | 第53-58页 |
| 2.2.6 统计学分析 | 第58-59页 |
| 第三章 实验结果及分析 | 第59-85页 |
| 3.1 关于金葡菌SpoVG参与Rot,Spa,ClfB调控功能研究 | 第59-78页 |
| 3.1.1 SpoVG正向调控rot的转录 | 第59-64页 |
| 3.1.2 SpoVG-Rot级联正向调控spa的转录 | 第64-68页 |
| 3.1.3 SpoVG-Rot级联正向调控clfB的转录 | 第68-71页 |
| 3.1.4 SpoVG和Rot影响金葡菌对纤维蛋白原的结合能力 | 第71-72页 |
| 3.1.5 SpoVG的磷酸化促进其与靶标DNA的结合能力 | 第72-75页 |
| 3.1.6 SpoVG影响金葡菌的细胞粘附及侵入能力 | 第75-78页 |
| 3.2 SpoVG通过调控SasC的转录影响金葡菌的细菌沉聚 | 第78-85页 |
| 3.2.1 spoVG缺陷菌株呈现明显的细菌沉聚现象 | 第78-80页 |
| 3.2.2 SpoVG影响多种细胞壁锚定蛋白的转录水平 | 第80-81页 |
| 3.2.3 SasC蛋白可以形成高聚物 | 第81-82页 |
| 3.2.4 SpoVG特异性结合sasC的启动子序列抑制其转录 | 第82-84页 |
| 3.2.5 SasC蛋白参与spoVG基因缺陷菌株引起的细菌沉聚过程 | 第84-85页 |
| 第四章 实验讨论 | 第85-91页 |
| 4.1 基因组回补与质粒回补 | 第85-86页 |
| 4.2 Stk1介导的磷酸化修饰 | 第86-87页 |
| 4.3 本课题总结 | 第87-91页 |
| 参考文献 | 第91-104页 |
| 附录-英文缩略语表 | 第104-106页 |
| 致谢 | 第106-108页 |
| 在读期间发表的学术论文与取得的其他研究成果 | 第108页 |
