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调节性T细胞在小鼠颅脑创伤中作用的研究

中文摘要第4-6页
Abstract第6-7页
缩略语/符号说明第11-13页
前言第13-16页
    研究现状、成果第13-14页
    研究目的、方法第14-16页
一、IL-2/anti-IL-2诱导Treg扩增并可促进TBI预后第16-41页
    1.1 对象和方法第16-29页
        1.1.1 实验动物第17页
        1.1.2 实验试剂第17页
        1.1.3 实验仪器和设备第17-18页
        1.1.4 实验试剂和耗材第18-21页
        1.1.5 主要试剂、液体的配制第21-22页
        1.1.6 小鼠TBI模型制备第22-23页
        1.1.7 实验干预与分组第23页
        1.1.8 流式细胞计数第23-25页
        1.1.9 脑水含量测定第25页
        1.1.10 免疫印迹第25-27页
        1.1.11 免疫组织荧光染色第27-28页
        1.1.12 改良神经功能评分第28-29页
        1.1.13 脑组织缺损实验第29页
        1.1.14 统计学方法第29页
    1.2 结果第29-37页
        1.2.1 IL-2/anti-IL-2对调节性T细胞的作用第29-30页
        1.2.2 不同剂量IL-2/anti-IL-2对炎性通路的影响第30-31页
        1.2.3 IL-2/anti-IL-2对外周CD4,CD8,NK及B220的影响第31-32页
        1.2.4 IL-2/anti-IL-2中枢神经系统内的调节性T细胞的影响第32-33页
        1.2.5 IL-2/anti-IL-2TBI神经功能的恢复的作用第33页
        1.2.6 IL-2/anti-IL-2对TBI后脑水肿的影响第33页
        1.2.7 IL-2/anti-IL-2TBI后脑缺损面积的影响第33-34页
        1.2.8 IL-2/anti-IL-2中性粒细胞浸润情况的影响第34-35页
        1.2.9 IL-2/anti-IL-2对M1型小胶质细胞相关标志物表达的影响第35-36页
        1.2.10 IL-2/anti-IL-2对M2型小胶质细胞相关标志物表达的影响第36-37页
    1.3 讨论第37-40页
    1.4 小结第40-41页
二、移植调节性T细胞可抑制TBI后过度炎症反应第41-65页
    2.1 对象和方法第41-56页
        2.1.1 实验动物第41-42页
        2.1.2 实验仪器和设备第42页
        2.1.3 实验试剂和耗材第42-45页
        2.1.4 主要试剂配置第45-46页
        2.1.5 小鼠TBI模型制备第46-47页
        2.1.6 实验动物分组第47页
        2.1.7 小鼠脾脏Treg及Teff细胞的提取第47-49页
        2.1.8 PKH67标记Treg细胞第49页
        2.1.9 Treg细胞侧脑室移植第49-50页
        2.1.10 测定伊文氏蓝渗透率第50-51页
        2.1.11 组织免疫荧光染色第51页
        2.1.12 脑内单个核细胞流式检测第51-52页
        2.1.13 实时荧光定量PCR第52-54页
        2.1.14 神经功能恢复第54-56页
        2.1.15 统计学分析第56页
    2.2 结果第56-62页
        2.2.1 调节性T细胞侧脑室移植可归巢到创伤灶第56-57页
        2.2.2 调节性T细胞侧脑室移植对神经功能恢复的影响第57-58页
        2.2.3 调节性T细胞侧脑室移植对中枢神经系统单核细胞浸润的影响第58-59页
        2.2.4 调节性T细胞侧脑室移植对M1型及M2型相关标志物的影响第59-60页
        2.2.5 调节性T细胞移植TBI后血脑屏障渗透率的影响第60页
        2.2.6 调节性T细胞移植对创伤脑组织MMP-9表达的影响第60-61页
        2.2.7 调节性T细胞侧脑室移植对紧密连接蛋白的影响第61-62页
    2.3 讨论第62-64页
    2.4 小结第64-65页
三、调节性T细胞来源外泌体抑制小胶质细胞的过度激活第65-77页
    3.1 对象和方法第65-73页
        3.1.1 实验动物第65-66页
        3.1.2 实验仪器和设备第66页
        3.1.3 实验试剂和耗材第66-68页
        3.1.4 主要试剂和液体的配制第68页
        3.1.5 小鼠脾脏Treg分选第68-70页
        3.1.6 Treg细胞的培养第70页
        3.1.7 外泌体的提取第70页
        3.1.8 外泌体的鉴定第70-71页
        3.1.9 外泌体吞噬实验第71-72页
        3.1.10 ELISA检测上清液中细胞因子情况第72-73页
        3.1.11 统计学方法第73页
    3.2 结果第73-74页
        3.2.1 调节性T细胞来源外泌体的鉴定第73页
        3.2.2 BV2小胶质细胞可以吞噬PKH67标记的Tregs来源外泌体第73-74页
        3.2.3 Treg来源外泌体对激活BV2细胞炎性因子表达的影响第74页
    3.3 讨论第74-76页
    3.4 小结第76-77页
全文结论第77-78页
论文创新点第78-79页
参考文献第79-88页
发表论文和参加科研情况说明第88-90页
综述 调节性T细胞研究进展第90-108页
    综述参考文献第99-108页
致谢第108-109页
个人简历第109页

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