| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 研究现状、成果 | 第13-14页 |
| 研究目的、方法 | 第14-16页 |
| 一、IL-2/anti-IL-2诱导Treg扩增并可促进TBI预后 | 第16-41页 |
| 1.1 对象和方法 | 第16-29页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第17页 |
| 1.1.2 实验试剂 | 第17页 |
| 1.1.3 实验仪器和设备 | 第17-18页 |
| 1.1.4 实验试剂和耗材 | 第18-21页 |
| 1.1.5 主要试剂、液体的配制 | 第21-22页 |
| 1.1.6 小鼠TBI模型制备 | 第22-23页 |
| 1.1.7 实验干预与分组 | 第23页 |
| 1.1.8 流式细胞计数 | 第23-25页 |
| 1.1.9 脑水含量测定 | 第25页 |
| 1.1.10 免疫印迹 | 第25-27页 |
| 1.1.11 免疫组织荧光染色 | 第27-28页 |
| 1.1.12 改良神经功能评分 | 第28-29页 |
| 1.1.13 脑组织缺损实验 | 第29页 |
| 1.1.14 统计学方法 | 第29页 |
| 1.2 结果 | 第29-37页 |
| 1.2.1 IL-2/anti-IL-2对调节性T细胞的作用 | 第29-30页 |
| 1.2.2 不同剂量IL-2/anti-IL-2对炎性通路的影响 | 第30-31页 |
| 1.2.3 IL-2/anti-IL-2对外周CD4,CD8,NK及B220的影响 | 第31-32页 |
| 1.2.4 IL-2/anti-IL-2中枢神经系统内的调节性T细胞的影响 | 第32-33页 |
| 1.2.5 IL-2/anti-IL-2TBI神经功能的恢复的作用 | 第33页 |
| 1.2.6 IL-2/anti-IL-2对TBI后脑水肿的影响 | 第33页 |
| 1.2.7 IL-2/anti-IL-2TBI后脑缺损面积的影响 | 第33-34页 |
| 1.2.8 IL-2/anti-IL-2中性粒细胞浸润情况的影响 | 第34-35页 |
| 1.2.9 IL-2/anti-IL-2对M1型小胶质细胞相关标志物表达的影响 | 第35-36页 |
| 1.2.10 IL-2/anti-IL-2对M2型小胶质细胞相关标志物表达的影响 | 第36-37页 |
| 1.3 讨论 | 第37-40页 |
| 1.4 小结 | 第40-41页 |
| 二、移植调节性T细胞可抑制TBI后过度炎症反应 | 第41-65页 |
| 2.1 对象和方法 | 第41-56页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第41-42页 |
| 2.1.2 实验仪器和设备 | 第42页 |
| 2.1.3 实验试剂和耗材 | 第42-45页 |
| 2.1.4 主要试剂配置 | 第45-46页 |
| 2.1.5 小鼠TBI模型制备 | 第46-47页 |
| 2.1.6 实验动物分组 | 第47页 |
| 2.1.7 小鼠脾脏Treg及Teff细胞的提取 | 第47-49页 |
| 2.1.8 PKH67标记Treg细胞 | 第49页 |
| 2.1.9 Treg细胞侧脑室移植 | 第49-50页 |
| 2.1.10 测定伊文氏蓝渗透率 | 第50-51页 |
| 2.1.11 组织免疫荧光染色 | 第51页 |
| 2.1.12 脑内单个核细胞流式检测 | 第51-52页 |
| 2.1.13 实时荧光定量PCR | 第52-54页 |
| 2.1.14 神经功能恢复 | 第54-56页 |
| 2.1.15 统计学分析 | 第56页 |
| 2.2 结果 | 第56-62页 |
| 2.2.1 调节性T细胞侧脑室移植可归巢到创伤灶 | 第56-57页 |
| 2.2.2 调节性T细胞侧脑室移植对神经功能恢复的影响 | 第57-58页 |
| 2.2.3 调节性T细胞侧脑室移植对中枢神经系统单核细胞浸润的影响 | 第58-59页 |
| 2.2.4 调节性T细胞侧脑室移植对M1型及M2型相关标志物的影响 | 第59-60页 |
| 2.2.5 调节性T细胞移植TBI后血脑屏障渗透率的影响 | 第60页 |
| 2.2.6 调节性T细胞移植对创伤脑组织MMP-9表达的影响 | 第60-61页 |
| 2.2.7 调节性T细胞侧脑室移植对紧密连接蛋白的影响 | 第61-62页 |
| 2.3 讨论 | 第62-64页 |
| 2.4 小结 | 第64-65页 |
| 三、调节性T细胞来源外泌体抑制小胶质细胞的过度激活 | 第65-77页 |
| 3.1 对象和方法 | 第65-73页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第65-66页 |
| 3.1.2 实验仪器和设备 | 第66页 |
| 3.1.3 实验试剂和耗材 | 第66-68页 |
| 3.1.4 主要试剂和液体的配制 | 第68页 |
| 3.1.5 小鼠脾脏Treg分选 | 第68-70页 |
| 3.1.6 Treg细胞的培养 | 第70页 |
| 3.1.7 外泌体的提取 | 第70页 |
| 3.1.8 外泌体的鉴定 | 第70-71页 |
| 3.1.9 外泌体吞噬实验 | 第71-72页 |
| 3.1.10 ELISA检测上清液中细胞因子情况 | 第72-73页 |
| 3.1.11 统计学方法 | 第73页 |
| 3.2 结果 | 第73-74页 |
| 3.2.1 调节性T细胞来源外泌体的鉴定 | 第73页 |
| 3.2.2 BV2小胶质细胞可以吞噬PKH67标记的Tregs来源外泌体 | 第73-74页 |
| 3.2.3 Treg来源外泌体对激活BV2细胞炎性因子表达的影响 | 第74页 |
| 3.3 讨论 | 第74-76页 |
| 3.4 小结 | 第76-77页 |
| 全文结论 | 第77-78页 |
| 论文创新点 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-88页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第88-90页 |
| 综述 调节性T细胞研究进展 | 第90-108页 |
| 综述参考文献 | 第99-108页 |
| 致谢 | 第108-109页 |
| 个人简历 | 第109页 |
