新型脑靶向性氰基丙烯酸酯类纳米基因载体的制备及抗胶质瘤活性研究
| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 研究背景综述 | 第12-23页 |
| 第一节 胶质瘤治疗研究概述 | 第12-14页 |
| 1.1.1 胶质瘤的生物学特征 | 第12页 |
| 1.1.2 胶质瘤治疗进展 | 第12-14页 |
| 第二节 纳米给药系统的研究进展 | 第14-17页 |
| 1.2.1 纳米给药系统的组成及分类 | 第14-16页 |
| 1.2.2 纳米给药系统的特点 | 第16-17页 |
| 第三节 纳米给药系统的胶质瘤治疗应用 | 第17-19页 |
| 1.3.1 治疗机理 | 第17-18页 |
| 1.3.2 纳米给药系统的修饰策略 | 第18-19页 |
| 第四节 反义寡核苷酸的研究进展 | 第19-23页 |
| 1.4.1 反义寡核苷酸的研究现状 | 第19-20页 |
| 1.4.2 胶质瘤的反义寡核苷酸治疗 | 第20-23页 |
| 第二章 课题设计 | 第23-26页 |
| 第一节 设计思想 | 第23-24页 |
| 第二节 创新性及意义 | 第24-26页 |
| 第三章 实验部分 | 第26-39页 |
| 第一节 实验材料 | 第26-27页 |
| 3.1.1 试剂 | 第26页 |
| 3.1.2 仪器 | 第26-27页 |
| 第二节 实验方法 | 第27-39页 |
| 3.2.1 单体的合成及表征 | 第27-32页 |
| 3.2.2 纳米微球的制备 | 第32-33页 |
| 3.2.3 纳米微球的物理表征 | 第33页 |
| 3.2.4 纳米微球与药物的结合能力 | 第33页 |
| 3.2.5 纳米微球对药物的保护能力 | 第33-34页 |
| 3.2.6 纳米微球的体外释药行为 | 第34页 |
| 3.2.7 网状内皮系统吞噬荧光微球研究 | 第34页 |
| 3.2.8 A172、U251肿瘤细胞摄取研究 | 第34-35页 |
| 3.2.9 抗肿瘤细胞活性研究 | 第35-36页 |
| 3.2.10 实时荧光定量PCR | 第36-38页 |
| 3.2.11 斑马鱼血脑屏障模型实验 | 第38页 |
| 3.2.12 统计学分析 | 第38-39页 |
| 第四章 实验结果与讨论 | 第39-67页 |
| 第一节 单体合成及基本表征 | 第39-41页 |
| 第二节 空白微球及载药球的制备及物理表征 | 第41-44页 |
| 4.2.1 微球设计 | 第41页 |
| 4.2.2 丁达尔现象 | 第41-42页 |
| 4.2.3 微球制备工艺优化 | 第42页 |
| 4.2.4 空白微球透射电镜 | 第42-43页 |
| 4.2.5 空白微球粒径及电势 | 第43-44页 |
| 第三节 微球与药物的结合能力 | 第44-46页 |
| 4.3.1 微球与DNA结合后的相关表征 | 第44-45页 |
| 4.3.2 ASON与NS不同质量比负载情况 | 第45页 |
| 4.3.3 包封率和载药量 | 第45-46页 |
| 第四节 微球对药物的保护能力 | 第46-47页 |
| 4.4.1 血清稳定性 | 第46页 |
| 4.4.2 DNaseI稳定性 | 第46-47页 |
| 第五节 微球的体外释药行为 | 第47-48页 |
| 4.5.1 建立标准曲线 | 第47-48页 |
| 4.5.2 体外释放曲线 | 第48页 |
| 第六节 网状内皮细胞吞噬荧光球研究 | 第48-53页 |
| 4.6.1 流式检测 | 第49-50页 |
| 4.6.2 共聚焦检测 | 第50-53页 |
| 第七节 胶质瘤细胞摄取研究 | 第53-56页 |
| 4.7.1 A172肿瘤细胞摄取 | 第53-54页 |
| 4.7.2 U251肿瘤细胞摄取 | 第54-56页 |
| 第八节 抗肿瘤活性研究 | 第56-64页 |
| 4.8.1 MTS法测定细胞抑制率 | 第56-58页 |
| 4.8.2 肿瘤细胞凋亡 | 第58-60页 |
| 4.8.3 实时荧光定量PCR | 第60-64页 |
| 第九节 斑马鱼血脑屏障模型 | 第64-67页 |
| 第五章 结论 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-78页 |
| 附录 | 第78-101页 |
| 学术期间研究成果 | 第101页 |
