| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-19页 |
| 1.1 植物中类黄酮的研究概况 | 第11-13页 |
| 1.1.1 植物类黄酮简介 | 第11-12页 |
| 1.1.2 多甲氧基黄酮及其生物学功能 | 第12页 |
| 1.1.3 柑橘中的多甲氧基黄酮 | 第12-13页 |
| 1.2 多甲氧基黄酮的检测技术 | 第13-14页 |
| 1.2.1 高效液相色谱法 | 第13页 |
| 1.2.2 液质联用法 | 第13-14页 |
| 1.2.3 气质联用法 | 第14页 |
| 1.3 多甲氧基黄酮的提取方法 | 第14-16页 |
| 1.3.1 有机溶剂提取法 | 第14-15页 |
| 1.3.2 超临界流体提取法 | 第15页 |
| 1.3.3 酶解法 | 第15页 |
| 1.3.4 微波辅助提取法 | 第15页 |
| 1.3.5 超声波辅助提取法 | 第15-16页 |
| 1.4 多甲氧基黄酮的分离纯化 | 第16-19页 |
| 1.4.1 大孔吸附树脂 | 第16-17页 |
| 1.4.2 制备型薄层色谱 | 第17页 |
| 1.4.3 超临界流体色谱 | 第17页 |
| 1.4.4 闪式色谱 | 第17-18页 |
| 1.4.5 高速逆流色谱 | 第18页 |
| 1.4.6 制备型液相色谱 | 第18-19页 |
| 第2章 引言 | 第19-21页 |
| 2.1 论文研究的目的和意义 | 第19页 |
| 2.2 论文研究的技术路线 | 第19-21页 |
| 第3章 材料与方法 | 第21-31页 |
| 3.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 3.2 主要试剂 | 第22-23页 |
| 3.2.1 类黄酮标准品 | 第22-23页 |
| 3.2.2 大孔吸附树脂 | 第23页 |
| 3.2.3 其他试剂 | 第23页 |
| 3.3 主要设备与仪器 | 第23-24页 |
| 3.4 实验方法 | 第24-31页 |
| 3.4.1 UPLC法测定类黄酮的方法学考察 | 第24页 |
| 3.4.2 柑橘果实主要类黄酮的测定 | 第24-25页 |
| 3.4.3 多甲氧基黄酮的提取 | 第25-26页 |
| 3.4.4 多甲氧基黄酮的富集除杂 | 第26-29页 |
| 3.4.5 多甲氧基黄酮的分离纯化 | 第29-30页 |
| 3.4.6 数据分析 | 第30-31页 |
| 第4章 结果与分析 | 第31-59页 |
| 4.1 柑橘果实主要类黄酮成分分析 | 第31-38页 |
| 4.1.1 UPLC定量法的方法学考察结果 | 第31页 |
| 4.1.2 不同基因型柑橘果实类黄酮的种类及含量差异 | 第31-36页 |
| 4.1.3 相同基因型柑橘果实类黄酮的含量变异 | 第36-38页 |
| 4.2 红橘果皮多甲氧基黄酮提取方法的建立 | 第38-46页 |
| 4.2.1 单因素试验结果 | 第38-43页 |
| 4.2.2 响应面优化结果 | 第43-46页 |
| 4.3 多甲氧基黄酮粗提物富集纯化方法的建立 | 第46-54页 |
| 4.3.1 大孔树脂的选择 | 第46页 |
| 4.3.2 HPD300型大孔树脂对TPMF的静态吸附和解吸动力学 | 第46-48页 |
| 4.3.3 HPD300型大孔树脂吸附TPMF的吸附热力学 | 第48-49页 |
| 4.3.4 大孔树脂的动态吸附与解吸附条件 | 第49-52页 |
| 4.3.5 富集前后粗提物中多甲氧基黄酮的组分及含量 | 第52-54页 |
| 4.4 多甲氧基黄酮的分离与纯化 | 第54-59页 |
| 4.4.1 制备液相分离条件的建立 | 第54-56页 |
| 4.4.2 自动收集触发条件的建立 | 第56-57页 |
| 4.4.3 分离纯化结果 | 第57-59页 |
| 第5章 讨论 | 第59-63页 |
| 5.1 适用于大量提取PMFs的柑橘材料 | 第59页 |
| 5.2 不同提取因素对TPMF提取量的影响 | 第59-60页 |
| 5.3 大孔树脂对PMFs的富集除杂 | 第60-62页 |
| 5.4 PMFs单体的分离制备 | 第62-63页 |
| 第6章 结论 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-75页 |
| 附录 | 第75-83页 |
| 致谢 | 第83-85页 |
| 发表论文和参研课题 | 第85-86页 |
| 附件 | 第86-89页 |
