| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-20页 |
| 1.1 精子头部结构及形成 | 第13-16页 |
| 1.2 精子尾部结构及形成 | 第16-18页 |
| 1.3 转录组测序技术 | 第18页 |
| 1.4 精子形成期间转录组研究现状 | 第18页 |
| 1.5 研究目的意义与内容 | 第18-20页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第20-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-23页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第20页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第21-22页 |
| 2.1.4 计算机软件及数据库网址 | 第22-23页 |
| 2.1.5 实验试剂配置 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-31页 |
| 2.2.1 转录组数据分析 | 第23-26页 |
| 2.2.2 生精细胞获取 | 第26-28页 |
| 2.2.3 总RNA提取及反转录 | 第28页 |
| 2.2.4 qPCR验证 | 第28-30页 |
| 2.2.5 PLD6生物信息学分析 | 第30-31页 |
| 第三章 研究结果 | 第31-49页 |
| 3.1 测序数据生物信息学分析 | 第31-41页 |
| 3.1.1 数据质控及比对 | 第32页 |
| 3.1.2 精子细胞变形期间的可变剪接 | 第32-34页 |
| 3.1.3 差异基因表达分析 | 第34-39页 |
| 3.1.4 变异分析 | 第39-40页 |
| 3.1.5 NovellncRNA | 第40-41页 |
| 3.2 差异基因筛选 | 第41-42页 |
| 3.3 生精细胞获取 | 第42-44页 |
| 3.4 生精细胞总RNA提取及质量检测 | 第44-45页 |
| 3.5 qPCR验证结果 | 第45-46页 |
| 3.6 PLD6蛋白的生物信息学分析 | 第46-49页 |
| 3.6.1 PLD6蛋白的特征分析 | 第46-47页 |
| 3.6.2 PLD6蛋白同源性及进化分析 | 第47-49页 |
| 第四章 讨论 | 第49-53页 |
| 4.1 测序数据分析讨论 | 第49-50页 |
| 4.2 CCIN、SPEM1、PDILT、TSSK1B基因表达分析讨论 | 第50-51页 |
| 4.3 Pld6基因表达情况及其蛋白序列分析讨论 | 第51-53页 |
| 第五章 全文结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 作者简历 | 第65页 |