| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 缩略词表 | 第11-12页 |
| 1 文献综述 | 第12-23页 |
| 1.1 前言 | 第12页 |
| 1.2 结核分枝杆菌与机体的免疫反应 | 第12-22页 |
| 1.2.1 树突状细胞 | 第13-14页 |
| 1.2.2 CD4~+T细胞 | 第14-16页 |
| 1.2.3 Th17细胞 | 第16-17页 |
| 1.2.4 Th17细胞的分化 | 第17-21页 |
| 1.2.5 γδ-T细胞 | 第21-22页 |
| 1.3 研究目的和意义 | 第22-23页 |
| 2 材料和方法 | 第23-44页 |
| 2.1 材料 | 第23-26页 |
| 2.1.1 实验菌株 | 第23页 |
| 2.1.2 实验动物 | 第23页 |
| 2.1.3 主要试剂和仪器设备 | 第23-24页 |
| 2.1.4 主要分析软件 | 第24页 |
| 2.1.5 主要试剂配方 | 第24-25页 |
| 2.1.6 多重PCR鉴定分枝杆菌复合群 | 第25-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-44页 |
| 2.2.1 M.bovis和BCG的培养 | 第26页 |
| 2.2.2 多重PCR鉴定M.bovis和BCG | 第26-28页 |
| 2.2.3 多重PCR鉴定结核分枝杆菌复合群的判断标准 | 第28页 |
| 2.2.4 树突状细胞的培养与鉴定 | 第28-30页 |
| 2.2.5 M.bovis和BCG感染树突状细胞 | 第30-32页 |
| 2.2.6 CD4~+T细胞的分离纯化 | 第32-33页 |
| 2.2.7 感染后的树突状细胞和CD4~+T细胞共培养 | 第33-36页 |
| 2.2.8 M.bovis和BCG感染小鼠模型的建立 | 第36页 |
| 2.2.9 M.bovis和BCG感染小鼠后组织载菌量的检测 | 第36-37页 |
| 2.2.10 M.bovis和BCG感染小鼠后脾脏和肺脏的H&E染色 | 第37-38页 |
| 2.2.11 小鼠脾脏淋巴细胞的分离和刺激培养 | 第38-39页 |
| 2.2.12 流式细胞抗体检测Th17细胞的分化 | 第39-40页 |
| 2.2.13 M.bovis和BCG感染小鼠后脾脏和肺脏组织mRNA表达 | 第40-42页 |
| 2.2.14 M.bovis和BCG感染小鼠后脾脏和肺脏免疫组化分析 | 第42-44页 |
| 3 结果和分析 | 第44-57页 |
| 3.1 多重PCR方法鉴定M.bovis与BCG | 第44页 |
| 3.2 DCs和CD4~+T细胞的共培养实验 | 第44-47页 |
| 3.2.1 小鼠骨髓源性未成熟DCs的分化和纯度鉴定 | 第44-45页 |
| 3.2.2 强弱菌株感染DCs后Th17分化相关基因的表达 | 第45-46页 |
| 3.2.3 细胞共培养后TH17分化相关基因的表达 | 第46-47页 |
| 3.3 M.bovis和BCG的感染对小鼠体重的影响 | 第47-48页 |
| 3.4 小鼠感染M.bovis和BCG后脾脏和肺脏组织载菌量 | 第48-49页 |
| 3.5 M.bovis和BCG的感染对小鼠脾脏和肺脏的影响 | 第49-50页 |
| 3.6 M.bovis和BCG感染小鼠后脾脏和肺脏的H&E染色 | 第50-52页 |
| 3.7 M.bovis和BCG感染小鼠后脾脏中Th17细胞的变化趋势 | 第52-54页 |
| 3.8 M.bovis和BCG感染小鼠后脾脏和肺脏组织mRNA分析 | 第54-55页 |
| 3.9 M.bovis和BCG感染小鼠后脾脏和肺脏免疫组化分析 | 第55-57页 |
| 4 讨论 | 第57-63页 |
| 4.1 牛分枝杆菌强弱菌株感染模型的评价 | 第57-58页 |
| 4.2 树突状细胞和CD4~+T细胞的共培养实验 | 第58-59页 |
| 4.3 Th17和IL-17 在M.bovis和BCG感染过程中的动态变化 | 第59-61页 |
| 4.3.1 Th17和IL-17 在小鼠脾脏中的动态变化 | 第59-60页 |
| 4.3.2 Th17和IL-17 在小鼠肺脏中的动态变化 | 第60-61页 |
| 4.4 小鼠脾脏和肺脏IL-17 的免疫组化 | 第61页 |
| 4.5 建议和展望 | 第61-63页 |
| 5 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-76页 |
| 在读期间发表文章目录 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77页 |
