| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-23页 |
| 研究现状、成果 | 第12-21页 |
| 研究目的、方法 | 第21-23页 |
| 1.对象和方法 | 第23-40页 |
| 1.1 对象 | 第23-27页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第23页 |
| 1.1.2 实验试剂 | 第23-24页 |
| 1.1.3 主要仪器设备及耗材 | 第24-25页 |
| 1.1.4 主要试剂的配制 | 第25-27页 |
| 1.2 实验方法 | 第27-40页 |
| 1.2.1 自身免疫性神经炎模型制备与分组 | 第27-28页 |
| 1.2.2 神经电生理检测 | 第28页 |
| 1.2.3 组织病理学检测 | 第28-30页 |
| 1.2.4 免疫荧光检测 | 第30-31页 |
| 1.2.5 聚合酶链式反应(Real-time PCR,RT-PCR) | 第31-34页 |
| 1.2.6 淋巴增殖实验—MTS | 第34页 |
| 1.2.7 ELISA测细胞培养上清中细胞因子的水平 | 第34-36页 |
| 1.2.8 流式细胞学检测 | 第36-37页 |
| 1.2.9 Western印迹分析 | 第37-40页 |
| 1.2.10 统计学分析 | 第40页 |
| 2.结果 | 第40-51页 |
| 2.1 RAD001治疗可以缓解EAN的临床症状,改善组织学变化和EAN大鼠引起的炎性细胞聚集 | 第40-43页 |
| 2.2 RAD001治疗减轻EAN引起的周围神经损伤 | 第43-44页 |
| 2.3 RAD001抑制p-P70S6K和p-4E-BP1，增加EAN大鼠坐骨神经p-Akt蛋白质含量 | 第44-45页 |
| 2.4 RAD001抑制淋巴细胞增殖反应 | 第45-47页 |
| 2.5 RAD001促进EAN大鼠M2巨噬细胞极化 | 第47-48页 |
| 2.6 RAD001对细胞因子的影响 | 第48-50页 |
| 2.7 RAD001对巨噬细胞极化的影响机制 | 第50-51页 |
| 3.讨论 | 第51-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 论文创新点 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-69页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第69-71页 |
| 综述 mTOR在炎性自身免疫性疾病中的作用 | 第71-86页 |
| 综述参考文献 | 第80-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
| 个人简历 | 第87页 |
