| 英文缩略词对照表 (Abbreviation) | 第7-9页 |
| 摘要 | 第9-14页 |
| Abstract | 第14-19页 |
| 1 前言 | 第21-24页 |
| 2 材料与仪器 | 第24-29页 |
| 2.1 实验动物与饲料 | 第24页 |
| 2.2 化学药品和试剂 | 第24-28页 |
| 2.3 小檗碱的制备 | 第28页 |
| 2.4 实验细胞 | 第28页 |
| 2.5 仪器与设备 | 第28-29页 |
| 3 实验方法 | 第29-38页 |
| 3.1 大鼠糖尿病肾病模型的建立 | 第29-30页 |
| 3.2 动物分组以及药物治疗 | 第30页 |
| 3.3 大鼠空腹血糖值和体重值的测定 | 第30页 |
| 3.4 样本收集以及大鼠肾功能和生化指标的测定 | 第30-31页 |
| 3.5 肾脏的组织病理学和形态学检查 | 第31-32页 |
| 3.5.1 HE染色检查 | 第31页 |
| 3.5.2 PAS染色检查 | 第31-32页 |
| 3.6 免疫组化法检测肾脏蛋白表达和分布 | 第32-33页 |
| 3.7 细胞培养 | 第33-34页 |
| 3.7.1 足细胞的培养 | 第33页 |
| 3.7.2 系膜细胞的培养 | 第33-34页 |
| 3.8 CCK-8 检测 | 第34页 |
| 3.9 ELISA检测 | 第34-35页 |
| 3.10 Western blotting检测 | 第35-36页 |
| 3.11 蛋白芯片检测 | 第36-37页 |
| 3.12 激光共聚焦法检测 | 第37-38页 |
| 3.13 数据分析 | 第38页 |
| 4 实验结果 | 第38-60页 |
| 4.1 BBR对DN大鼠的体重和空腹血糖的影响 | 第38页 |
| 4.2 BBR对DN大鼠的肾功能和生化指标的影响 | 第38-39页 |
| 4.3 BBR对大鼠肾脏组织病理学的影响 | 第39-41页 |
| 4.4 免疫组化法检测DN大鼠肾脏AGEs，RAGE，p-PKC-β和TGF-β1 的分布和表达 | 第41-45页 |
| 4.5 BBR对DN大鼠肾脏皮质中的AGEs，RAGE，PKC-β，p-PKC-β和TGF-β1 的表达水平的影响 | 第45-47页 |
| 4.6 VEGF对系膜细胞的生长增殖的影响 | 第47-48页 |
| 4.7 BBR对足细胞和系膜细胞的生长增殖的影响 | 第48-50页 |
| 4.8 BBR对大鼠血清和GMCs上清液中的AGEs含量的影响 | 第50-51页 |
| 4.9 BBR降低高糖诱导的GMCs中AGEs和RAGE的表达 | 第51-52页 |
| 4.10 BBR对高糖诱导的系膜细胞中p-PKC-β和TGF-β1 表达的影响 | 第52-53页 |
| 4.11 AGEs-RAGE系统对PKC-β和TGF-β1 表达的影响 | 第53-55页 |
| 4.12 激光共聚焦法检测BBR对RAGE影响 | 第55-56页 |
| 4.13 足细胞中VEGF的表达和BBR的影响 | 第56-57页 |
| 4.14 BBR对系膜细胞VEGFR2表达的影响 | 第57-59页 |
| 4.15 BBR对足细胞和系膜细胞之间VEGF-VEGFR2通路的影响 | 第59-60页 |
| 5 讨论 | 第60-66页 |
| 5.1 AGEs在DN病理过程中的作用以及BBR在DN状态下的肾脏保护作用 | 第60-62页 |
| 5.2 BBR对肾脏AGEs-RAGE系统的影响 | 第62-63页 |
| 5.3 BBR对肾脏AGEs-RAGE通路下游因子TGF-β1 的影响 | 第63-64页 |
| 5.4 BBR对肾脏AGEs-RAGE通路下游因子PKC-β的影响 | 第64-65页 |
| 5.5 BBR对DN状态下足细胞与系膜细胞之间相互作用的影响 | 第65-66页 |
| 6 结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-76页 |
| 附录 | 第76-78页 |
| 致谢 | 第78-80页 |
| 综述 | 第80-120页 |
| References | 第105-120页 |
