| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-29页 |
| 1.1 研究背景及意义 | 第10-21页 |
| 1.1.1 炎症反应中白细胞的重要作用 | 第10-12页 |
| 1.1.2 炎症级联事件中的重要分子 | 第12-17页 |
| 1.1.2.1 免疫球蛋白类分子 | 第12页 |
| 1.1.2.2 选择素家族 | 第12-13页 |
| 1.1.2.3 趋化因子 | 第13-14页 |
| 1.1.2.4 钙黏附素家族 | 第14-15页 |
| 1.1.2.5 整合素家族 | 第15-17页 |
| 1.1.3 力学因素对整合素构象改变的影响 | 第17-20页 |
| 1.1.4 二价金属离子对整合素构象的影响 | 第20-21页 |
| 1.2 国内外的研究现状 | 第21-27页 |
| 1.2.1 LFA-1 与ICAM-1 相互作用的研究 | 第21-22页 |
| 1.2.2 整合素信号通路的研究 | 第22-23页 |
| 1.2.2.1 整合素“由内到外”信号通路 | 第22-23页 |
| 1.2.2.2 整合素“由外到内”信号通路 | 第23页 |
| 1.2.3 目前研究的主要技术手段 | 第23-26页 |
| 1.2.3.1 流动腔技术 | 第24-25页 |
| 1.2.3.2 生物膜力探针 | 第25页 |
| 1.2.3.3 原子力显微镜 | 第25-26页 |
| 1.2.3.4 分子动力学模拟 | 第26页 |
| 1.2.4 整合素激活的数学模型 | 第26-27页 |
| 1.3 科学问题的提出与论文的主要内容概述 | 第27-28页 |
| 1.3.1 科学问题的提出 | 第27-28页 |
| 1.3.2 论文的主要内容 | 第28页 |
| 1.4 本章小结 | 第28-29页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第29-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第29-32页 |
| 2.1.1 细胞 | 第29页 |
| 2.1.2 蛋白分子与实验试剂 | 第29-30页 |
| 2.1.3 实验仪器设备 | 第30-32页 |
| 2.1.3.1 细胞培养所需设备 | 第30页 |
| 2.1.3.2 流动腔实验系统 | 第30-32页 |
| 2.2 实验方法 | 第32-36页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第32-35页 |
| 2.2.1.1 细胞复苏 | 第32-33页 |
| 2.2.1.2 细胞传代 | 第33-34页 |
| 2.2.1.3 细胞冻存 | 第34页 |
| 2.2.1.4 细胞计数 | 第34-35页 |
| 2.2.2 流动腔实验 | 第35-36页 |
| 2.3 本章小结 | 第36-37页 |
| 第三章 流动腔系统稳定性与功能化研究 | 第37-44页 |
| 3.1 流动腔系统稳定性研究 | 第37-39页 |
| 3.1.1 稳定性测试方法 | 第37-38页 |
| 3.1.2 稳定性测试结果 | 第38-39页 |
| 3.2 流动腔系统特异性实验 | 第39-42页 |
| 3.2.1 特异性实验底板准备 | 第39-40页 |
| 3.2.2 特异性实验操作 | 第40-41页 |
| 3.2.3 特异性实验结果 | 第41-42页 |
| 3.3 讨论 | 第42-43页 |
| 3.4 本章小结 | 第43-44页 |
| 第四章 不同力学条件下LFA-1 与ICAM-1 的相互作用 | 第44-57页 |
| 4.1 实验材料 | 第44页 |
| 4.1.1 细胞 | 第44页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第44页 |
| 4.2 实验方法 | 第44-47页 |
| 4.2.1 底板功能化 | 第44-45页 |
| 4.2.2 细胞悬浮液的配制 | 第45页 |
| 4.2.3 流动腔实验 | 第45-46页 |
| 4.2.4 白细胞整合素LFA-1 亲和态的转变 | 第46-47页 |
| 4.3 结果及分析 | 第47-54页 |
| 4.3.1 不同流体壁面剪切力对LFA-1/ICAM-1 相互作用的影响 | 第47-50页 |
| 4.3.2 LFA-1/ICAM-1 分子键生存时间频数分布 | 第50-52页 |
| 4.3.3 LFA-1 亲和力构象的转变对键的解离速率及生存时间的影响 | 第52-54页 |
| 4.4 讨论 | 第54-56页 |
| 4.5 本章小结 | 第56-57页 |
| 总结与展望 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-68页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 附表 | 第70页 |
