摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-11页 |
1 前言 | 第11-18页 |
2 马氏珠母贝 Shematrin‐2β基因的克隆和序列分析 | 第18-40页 |
摘要 | 第18页 |
·前言 | 第18-20页 |
·材料与方法 | 第20-21页 |
·材料 | 第20页 |
·试剂 | 第20页 |
·设备 | 第20-21页 |
·方法与步骤 | 第21-28页 |
·马氏珠母贝的暂养 | 第21页 |
·器材准备 | 第21页 |
·马氏珠母贝总 RNA 的提取 | 第21-22页 |
·马氏珠母贝总 RNA 的纯化 | 第22页 |
·马氏珠母贝总 RNA 浓度的测定 | 第22页 |
·shematrin‐2β基因的 5’RACE 扩增 | 第22-26页 |
·Shematrin‐2β基因的克隆 | 第26-27页 |
·Shematrin‐2β基因的测序 | 第27页 |
·Shematrin‐2β全长基因的序列分析 | 第27-28页 |
·结果 | 第28-35页 |
·Shematrin‐2β基因 cDNA 序列及推导蛋白质序列 | 第28-29页 |
·Shematrin‐2β理化性质及结构功能的预测 | 第29-32页 |
·Shematrin‐2β的序列比对结果 | 第32-34页 |
·Shematrin‐2β基因在四种壳色马氏珠母贝中的表达情况 | 第34-35页 |
·讨论 | 第35-39页 |
·结论 | 第39-40页 |
3 温度和盐度对马氏珠母贝(Pinctada fucata)Nacrein 基因表达的联合效应 | 第40-51页 |
摘要 | 第40页 |
·前言 | 第40-41页 |
·材料与方法 | 第41-45页 |
·实验材料与试剂设备 | 第41-42页 |
·实验设计 | 第42-43页 |
·实验方法与步骤 | 第43-45页 |
·数据处理 | 第45页 |
·结果与分析 | 第45-47页 |
·红壳色马氏珠母贝 Nacrein 基因的表达模型方程的建立 | 第45-46页 |
·红壳色马氏珠母贝 Nacrein 基因表达的响应曲面分析 | 第46页 |
·结果的优化 | 第46-47页 |
·讨论 | 第47-49页 |
·温度对 Nacrein 基因表达的影响 | 第47-48页 |
·盐度对 Nacrein 基因表达的影响 | 第48-49页 |
·温度和盐度的互作效应 | 第49页 |
·模型的建立和优化 | 第49页 |
·结论 | 第49-51页 |
4 Ca~(2+)和 Mg~(2+)浓度对 Nacrein 基因表达的联合影响 | 第51-59页 |
摘要 | 第51页 |
·前言 | 第51页 |
·材料与方法 | 第51-52页 |
·材料 | 第51页 |
·试剂 | 第51页 |
·设备 | 第51-52页 |
·方法与步骤 | 第52-54页 |
·马氏珠母贝的暂养 | 第52页 |
·实验设计 | 第52页 |
·总 RNA 提取 | 第52-53页 |
·总 RNA 的纯化 | 第53页 |
·总 RNA 浓度的测定 | 第53页 |
·cDNA 第一链的合成 | 第53页 |
·基因表达量的测定 | 第53-54页 |
·数据统计与分析 | 第54页 |
·结果与分析 | 第54-57页 |
·马氏珠母贝 Nacrein 基因的表达模型方程的建立 | 第54-55页 |
·Ca~(2+)和 Mg~(2+)对马氏珠母贝 Nacrein 基因表达量影响的回归分析 | 第55-56页 |
·Nacrein 基因表达的响应曲面及等高线图分析 | 第56-57页 |
·讨论 | 第57-58页 |
·Ca~(2+)浓度对 Nacrein 基因表达量的影响 | 第57页 |
·Mg~(2+)浓度对 Nacrein 基因表达量的影响 | 第57页 |
·Ca~(2+)和 Mg~(2+)的互作效应对 Nacrein 基因表达量的影响 | 第57-58页 |
·结论 | 第58-59页 |
5 主要结论 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-69页 |
附录1 总 RNA 电泳图及 5’RACE 多次巢式 PCR 后获得的单一条带 | 第69-70页 |
附录2 文中涉及到的 GO term 的相关信息 | 第70-72页 |
附录3 关于 C‐score、S‐score 和 Y‐score 的含义 | 第72-73页 |
致谢 | 第73-74页 |
作者简介 | 第74-75页 |
导师简介 | 第75页 |