| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-17页 |
| 第一章 前言 | 第17-32页 |
| ·降解菌的分离 | 第24-26页 |
| ·酶学的研究 | 第26页 |
| ·不同光学异构体的降解研究 | 第26-28页 |
| ·降解途径的研究 | 第28-30页 |
| ·降解基因克隆 | 第30页 |
| ·研究意义 | 第30-32页 |
| 第二章 甲氰菊酯残留物IC-ELISA检测方法的建立 | 第32-40页 |
| ·材料与方法 | 第32-35页 |
| ·试剂 | 第32页 |
| ·ELISA测定所用试剂 | 第32-33页 |
| ·仪器 | 第33页 |
| ·甲氰菊酯免疫抗原的合成与鉴定 | 第33-34页 |
| ·甲氰菊酯多克隆抗体的制备 | 第34页 |
| ·间接ELISA法测定包被原最佳工作浓度和抗血清效价 | 第34页 |
| ·FA多抗交叉反应测定与标准曲线的建立 | 第34-35页 |
| ·结果与分析 | 第35-38页 |
| ·甲氰菊酯半抗原的紫外扫描分析 | 第35-36页 |
| ·甲氰菊酸半抗原结合比 | 第36页 |
| ·包被抗原工作质量浓度和抗体效价的确定 | 第36页 |
| ·标准曲线的建立 | 第36-37页 |
| ·交叉反应试验 | 第37-38页 |
| ·讨论 | 第38-39页 |
| ·结论 | 第39-40页 |
| 第三章 降解拟除虫菊酯类农药残留物复合菌群的驯化 | 第40-53页 |
| ·材料与方法 | 第40-45页 |
| ·主要培养基、试剂和仪器 | 第40-41页 |
| ·菌群的驯化 | 第41页 |
| ·菌群细胞的获得 | 第41页 |
| ·菌群JZ-1生物量测定 | 第41-42页 |
| ·菌群降解拟除虫菊酯类农药残留物特点 | 第42页 |
| ·拟除虫菊酯类农药残留量测定 | 第42页 |
| ·16S rDNA扩增 | 第42-43页 |
| ·16S rDNA文库构建及筛选 | 第43页 |
| ·重组子16S rDNA PCR扩增及RFLP分析 | 第43-44页 |
| ·测序与系统进化树分析 | 第44页 |
| ·核酸序列注册登记号 | 第44-45页 |
| ·结果与分析 | 第45-51页 |
| ·驯化结果 | 第45页 |
| ·菌群的降解特点 | 第45-47页 |
| ·16S rDNA的PCR扩增 | 第47页 |
| ·16S rDNA的文库构建及PCR扩增 | 第47-48页 |
| ·RFLP和测序分析 | 第48-51页 |
| ·讨论 | 第51-52页 |
| ·结论 | 第52-53页 |
| 第四章 光合细菌降解菌的分离与鉴定 | 第53-63页 |
| ·材料与方法 | 第53-56页 |
| ·培养基、主要试剂和仪器 | 第53页 |
| ·降解菌的分离 | 第53-54页 |
| ·降解菌的快速IC-ELISA筛选 | 第54页 |
| ·电镜样品制备及观察 | 第54页 |
| ·活细胞吸收光谱的测定 | 第54-55页 |
| ·菌株的生理生化特征的测定 | 第55页 |
| ·菌体16S rDNA序列的测定及系统发育分析 | 第55-56页 |
| ·降解菌降解效率 | 第56页 |
| ·甲氰菊酯残留量的测定 | 第56页 |
| ·结果与分析 | 第56-61页 |
| ·IC-ELISA快速筛选降解菌 | 第56页 |
| ·菌株分离及其生理生化特性 | 第56-59页 |
| ·菌体吸收光谱 | 第59-60页 |
| ·16S rDNA序列同源性及其系统发育树分析 | 第60-61页 |
| ·降解菌鉴定结果 | 第61页 |
| ·降解菌降解效率 | 第61页 |
| ·讨论 | 第61-62页 |
| ·结论 | 第62-63页 |
| 第五章 光合细菌PSB07-15降解拟除虫菊酯类农药残留物的特性 | 第63-72页 |
| ·材料与方法 | 第63-66页 |
| ·培养基、试剂与主要仪器 | 第63页 |
| ·降解菌 | 第63-64页 |
| ·对甲氰菊酯的耐受 | 第64页 |
| ·不同初始条件降解效率 | 第64页 |
| ·最适条件下降解效率 | 第64页 |
| ·降解谱 | 第64页 |
| ·代谢方式 | 第64-65页 |
| ·降解菌粗酶液提取 | 第65页 |
| ·降解酶活力测定 | 第65页 |
| ·拟除虫菊酯类农药残留量的测定 | 第65-66页 |
| ·结果与分析 | 第66-70页 |
| ·对甲氰菊酯的耐受浓度 | 第66页 |
| ·最适降解条件 | 第66-68页 |
| ·最适条件下降解效率 | 第68-69页 |
| ·代谢方式 | 第69页 |
| ·降解酶定位 | 第69-70页 |
| ·讨论 | 第70页 |
| ·结论 | 第70-72页 |
| 第六章 光合细菌PSB07-15降解甲氰菊酯残留物的机理 | 第72-77页 |
| ·材料和方法 | 第72-73页 |
| ·培养基、试剂和主要仪器 | 第72页 |
| ·降解菌 | 第72-73页 |
| ·降解过程中pH变化 | 第73页 |
| ·试验处理及样品前处理 | 第73页 |
| ·代谢中间产物检测 | 第73页 |
| ·结果与分析 | 第73-75页 |
| ·pH变化 | 第73-74页 |
| ·代谢产物分析 | 第74-75页 |
| ·讨论 | 第75-76页 |
| ·结论 | 第76-77页 |
| 第七章 光合细菌PSB07-15对作物生长的影响 | 第77-82页 |
| ·材料与方法 | 第77-79页 |
| ·试剂、培养基与仪器 | 第77页 |
| ·降解菌 | 第77页 |
| ·降解菌产吲哚乙酸的含量 | 第77-78页 |
| ·降解菌ACC脱氨酶活性 | 第78-79页 |
| ·降解菌对玉米根长的影响 | 第79页 |
| ·数据处理 | 第79页 |
| ·结果与分析 | 第79-81页 |
| ·菌株PSB07-15产吲哚乙酸(IAA)量 | 第79-80页 |
| ·菌株PSB07-15 ACC脱氨酶活性 | 第80页 |
| ·菌株PSB07-15对玉米胚根生长的影响 | 第80-81页 |
| ·讨论 | 第81页 |
| ·结论 | 第81-82页 |
| 第八章 光合细菌PSB07-15对水培黄瓜体系中甲氰菊酯污染的生物修复 | 第82-92页 |
| ·材料与方法 | 第82-86页 |
| ·培养基、试剂和主要仪器 | 第82-83页 |
| ·降解菌与黄瓜品种 | 第83页 |
| ·水培装置 | 第83页 |
| ·黄瓜苗的准备与移植 | 第83-84页 |
| ·处理设计 | 第84页 |
| ·黄瓜生长情况测定 | 第84页 |
| ·黄瓜根活力测定 | 第84-85页 |
| ·黄瓜根H_2O_2酶活性测定 | 第85页 |
| ·甲氰菊酯含量测定 | 第85-86页 |
| ·数据分析方法 | 第86页 |
| ·结果与分析 | 第86-90页 |
| ·黄瓜生长情况 | 第86-87页 |
| ·黄瓜根活力 | 第87-88页 |
| ·黄瓜根H_2O_2酶活性 | 第88页 |
| ·光合细菌PSB07-15降解黄瓜营养液中甲氰菊酯残留物 | 第88-89页 |
| ·光合细菌PSB07-15降解黄瓜中的甲氰菊酯残留物 | 第89-90页 |
| ·讨论 | 第90-91页 |
| ·结论 | 第91-92页 |
| 第九章 光合细菌PSB07-21降解拟除虫菊酯类农药残留物的特性及降解酶基因的克隆 | 第92-101页 |
| ·材料与方法 | 第92-94页 |
| ·培养基、试剂与主要仪器 | 第92页 |
| ·降解菌 | 第92页 |
| ·不同初始条件降解效率 | 第92-93页 |
| ·最适条件下降解效率 | 第93页 |
| ·总DNA提取 | 第93页 |
| ·引物设计、降解酶基因的克隆与序列测定 | 第93页 |
| ·序列分析 | 第93-94页 |
| ·添加微量Fe(Ⅱ)降解试验 | 第94页 |
| ·拟除虫菊酯类农药残留量的测定 | 第94页 |
| ·结果与分析 | 第94-99页 |
| ·菌株PSB07-21降解拟除虫菊酯类农药残留物最适条件 | 第94-96页 |
| ·菌株PSB07-21降解拟除虫菊酯类农药残留物效率 | 第96页 |
| ·引物设计 | 第96页 |
| ·PCR克隆与测序 | 第96-98页 |
| ·序列分析 | 第98页 |
| ·添加微量Fe(Ⅱ)降解实验 | 第98-99页 |
| ·讨论 | 第99页 |
| ·结论 | 第99-101页 |
| 参考文献 | 第101-113页 |
| 致谢 | 第113-115页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第115页 |
