| 中文摘要 | 第3-5页 |
| 英文摘要 | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第9-23页 |
| 1.1 有机药物的研究现状 | 第9-15页 |
| 1.1.1 有机药物的种类及来源 | 第9-10页 |
| 1.1.2 水环境中有机药物的污染现状及毒害性 | 第10-12页 |
| 1.1.3 有机药物去除研究现状 | 第12-15页 |
| 1.2 锰氧化菌及生物氧化锰的研究现状 | 第15-20页 |
| 1.2.1 锰氧化菌的概述 | 第15-16页 |
| 1.2.2 锰氧化菌氧化Mn(Ⅱ)的原因与生物氧化锰的形成机制 | 第16-17页 |
| 1.2.3 锰氧化菌氧化Mn(Ⅱ)的影响因素 | 第17-18页 |
| 1.2.4 生物氧化锰的特征 | 第18-19页 |
| 1.2.5 生物氧化锰的环境意义 | 第19-20页 |
| 1.3 研究的目的、意义 | 第20-21页 |
| 1.4 研究的主要内容 | 第21-22页 |
| 1.5 研究的技术路线 | 第22-23页 |
| 2 实验材料及测试方法 | 第23-35页 |
| 2.1 实验材料 | 第23-28页 |
| 2.1.1 菌种来源 | 第23页 |
| 2.1.2 培养基的成分 | 第23-24页 |
| 2.1.3 有机药物 | 第24-25页 |
| 2.1.4 实验所用试剂及材料 | 第25-28页 |
| 2.2 测试方法 | 第28-35页 |
| 2.2.1 有机药物浓度测试方法 | 第28-31页 |
| 2.2.2 生物氧化锰浓度测试方法 | 第31-32页 |
| 2.2.3 Mn~(2+)浓度测试方法 | 第32-33页 |
| 2.2.4 生物氧化锰的XRD表征 | 第33页 |
| 2.2.5 菌源微生物多样性分析 | 第33-35页 |
| 3 锰氧化菌的激活及生物氧化锰的表征 | 第35-47页 |
| 3.1 实验方案 | 第35页 |
| 3.2 菌源及培养基的选择 | 第35-38页 |
| 3.3 不同pH对锰氧化菌激活的影响 | 第38-40页 |
| 3.4 不同Mn~(2+)投加量对锰氧化菌激活的影响 | 第40-42页 |
| 3.5 生物氧化锰的制备及XRD表征 | 第42-43页 |
| 3.6 激活过程中微生物群落的变化 | 第43-45页 |
| 3.7 本章小结 | 第45-47页 |
| 4 生物氧化锰对四种典型有机药物的去除 | 第47-65页 |
| 4.1 实验方案 | 第47-48页 |
| 4.2 生物氧化锰去除双氯芬酸效果的研究 | 第48-52页 |
| 4.2.1 pH对生物氧化锰去除双氯芬酸效果的影响 | 第48-50页 |
| 4.2.2 投加量对生物氧化锰去除双氯芬酸效果的影响 | 第50-52页 |
| 4.3 生物氧化锰去除萘普生效果的研究 | 第52-56页 |
| 4.3.1 pH对生物氧化锰去除萘普生效果的影响 | 第52-54页 |
| 4.3.2 投加量对生物氧化锰去除萘普生效果的影响 | 第54-56页 |
| 4.4 生物氧化锰去除乙炔基雌二醇效果的研究 | 第56-59页 |
| 4.4.1 pH对生物氧化锰去除乙炔基雌二醇效果的影响 | 第56-58页 |
| 4.4.2 投加量对生物氧化锰去除乙炔基雌二醇效果的影响 | 第58-59页 |
| 4.5 生物氧化锰去除卡马西平效果的研究 | 第59-63页 |
| 4.5.1 pH对生物氧化锰去除卡马西平效果的影响 | 第59-62页 |
| 4.5.2 投加量对生物氧化锰去除卡马西平效果的影响 | 第62-63页 |
| 4.6 本章小结 | 第63-65页 |
| 5 结论与建议 | 第65-67页 |
| 5.1 结论 | 第65-66页 |
| 5.1.1 锰氧化菌的激活及生物氧化锰的表征 | 第65页 |
| 5.1.2 生物氧化锰对四种有机药物的去除 | 第65-66页 |
| 5.2 后续研究建议 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-79页 |
| 附录 | 第79页 |
| A.作者在攻读学位期间取得的科研成果 | 第79页 |
