| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 引言 | 第11-12页 |
| 上篇 文献综述 | 第12-63页 |
| 第一章 稻瘟病菌与水稻互作的细胞生物学研究概况 | 第13-47页 |
| 1 稻瘟病菌侵染循环 | 第13-14页 |
| 2 稻瘟病菌与寄主互作的细胞生物学机制研究概况 | 第14-17页 |
| 2.1 植物免疫系统 | 第14-15页 |
| 2.2 稻瘟病菌效应分子 | 第15-16页 |
| 2.3 稻瘟病菌效应分子抑制寄主免疫反应机制研究概况 | 第16-17页 |
| 3 稻瘟病菌效应分子分泌系统 | 第17-18页 |
| 4 效应分子在寄主细胞间的转运机制 | 第18-19页 |
| 5 植物激素在水稻免疫过程中的相互作用 | 第19-26页 |
| 5.1 水杨酸在水稻防卫反应过程中的作用 | 第20-21页 |
| 5.2 茉莉酸在水稻防卫反应过程中的作用 | 第21-22页 |
| 5.3 乙烯在水稻防卫反应过程中的作用 | 第22-23页 |
| 5.4 赤霉素在水稻防卫反应过程中的作用 | 第23-24页 |
| 5.5 生长素在水稻防卫反应过程中的作用 | 第24-25页 |
| 5.6 油菜素甾醇在水稻防卫反应过程中的作用 | 第25页 |
| 5.7 脱落酸在水稻防卫反应过程中的作用 | 第25-26页 |
| 6 叶绿体在植物免疫反应过程中的作用 | 第26-32页 |
| 6.1 叶绿体是合成防卫分子前体的主要场所 | 第27-29页 |
| 6.2 微生物效应分子干扰叶绿体中防卫分子前体的形成 | 第29-30页 |
| 6.3 微生物效应分子直接靶向叶绿体促进病害的形成 | 第30-32页 |
| 展望 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-47页 |
| 第二章 SNARE蛋白在囊泡运输过程中的作用 | 第47-63页 |
| 1 SNARE蛋白的结构 | 第47-48页 |
| 2 SNARE蛋白的分类 | 第48页 |
| 3 SNARE蛋白在膜融合过程中的作用 | 第48-49页 |
| 4 SNARE蛋白的定位和特异性 | 第49-50页 |
| 5 SNARE蛋白在囊泡运输过程中的作用 | 第50-55页 |
| 5.1 囊泡的形成 | 第50-53页 |
| 5.2 SNARE在胞吞过程中的作用 | 第53-54页 |
| 5.3 SNARE蛋白在外泌过程中的作用 | 第54-55页 |
| 6 SNARE蛋白调控效应分子的分泌 | 第55-56页 |
| 展望 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-63页 |
| 下篇 研究内容 | 第63-145页 |
| 第一章 稻瘟病菌SNARE蛋白MoSyn8调控外泌蛋白分泌的机制研究 | 第65-81页 |
| 1 材料与方法 | 第66-69页 |
| 1.1 供试菌株及培养条件 | 第66-67页 |
| 1.2 载体构建 | 第67-68页 |
| 1.3 水稻喷雾和叶鞘侵染 | 第68页 |
| 1.4 菌丝荧光显微观察 | 第68-69页 |
| 1.5 外泌蛋白的提取 | 第69页 |
| 2 结果与分析 | 第69-75页 |
| 2.1 MoSyn8调控无毒效应分子的分泌 | 第69-71页 |
| 2.2 MoSyn8调控细胞质效应分子Avr-Pia和Avr-Piz-t的分泌 | 第71-74页 |
| 2.3 外泌蛋白质组鉴定MoSyn8调控的外泌蛋白 | 第74-75页 |
| 2.4 外泌相关基因的敲除及致病性测定 | 第75页 |
| 3 讨论 | 第75-78页 |
| 参考文献 | 第78-81页 |
| 第二章 外泌致病因子MoPrs5抑制寄主防卫反应的机制研究 | 第81-111页 |
| 1 材料与方法 | 第83-85页 |
| 1.1 试验材料及培养条件 | 第83页 |
| 1.2 稻瘟病菌DNA和侵染阶段RNA的提取及cDNA的合成 | 第83页 |
| 1.3 水稻喷雾、叶鞘侵染和DAB染色 | 第83页 |
| 1.4 载体构建 | 第83-84页 |
| 1.5 信号肽功能验证 | 第84-85页 |
| 1.6 磷酸化检测 | 第85页 |
| 2 结果与分析 | 第85-103页 |
| 2.1 MoPRS5基因在菌丝阶段和侵染早期上调表达 | 第85-86页 |
| 2.2 MoPrs5调控稻瘟病菌营养菌丝生长,不影响分生孢子形成及分化 | 第86-87页 |
| 2.3 MoPrs5调控稻瘟病菌致病力 | 第87-88页 |
| 2.4 MoPrs5调控侵染菌丝扩展 | 第88-89页 |
| 2.5 MoPrs5抑制ROS的产生 | 第89-90页 |
| 2.6 MoPrs5氨基端信号肽能够正常行使外泌功能 | 第90-91页 |
| 2.7 MoPrs5侵染阶通过BIC结构分泌到寄主细胞中 | 第91-92页 |
| 2.8 MoPrs5能够抑制BAX诱导的烟草细胞坏死 | 第92-93页 |
| 2.9 MoPrs5与水稻中的叶绿素a/b结合蛋白互作 | 第93-95页 |
| 2.10 MoPrs5与Lhcb5在叶绿体中共定位 | 第95-96页 |
| 2.11 MoPRS5和LHCB5转基因水稻的获得及验证 | 第96-97页 |
| 2.12 Lhcb5调控水稻对稻瘟病菌的抗性 | 第97-98页 |
| 2.13 稻瘟病菌侵染诱导LHCB5-OE过表达材料细胞坏死 | 第98-100页 |
| 2.14 Lhcb5调控水稻对稻瘟病菌的广谱抗性 | 第100页 |
| 2.15 MoPRS5不影响LHBC5的转录和翻译 | 第100-101页 |
| 2.16 MoPrs5劫持Lhcb5的磷酸化基团 | 第101-103页 |
| 3 讨论 | 第103-106页 |
| 参考文献 | 第106-111页 |
| 第三章 SNARE蛋白MoVam7调控囊泡相关蛋白转运机制研究 | 第111-145页 |
| 1 材料与方法 | 第113-115页 |
| 1.1 试验材料及培养条件 | 第113页 |
| 1.2 稻瘟病菌DNA和侵染阶段RNA的提取及cDNA的合成 | 第113页 |
| 1.3 水稻喷雾、叶鞘侵染和DAB染色 | 第113页 |
| 1.4 囊泡的提取和纯化 | 第113-114页 |
| 1.5 敲除载体的构建和Southern验证 | 第114-115页 |
| 1.6 不同细胞器组分蛋白载体构建及Western blot检测 | 第115页 |
| 2 结果与分析 | 第115-138页 |
| 2.1 MoVam7调控的囊泡蛋白的鉴定 | 第115-121页 |
| 2.2 囊泡蛋白提取特异性及囊泡相关基因转录水平分析 | 第121-122页 |
| 2.3 MoVam7影响MoSsa1的定位 | 第122页 |
| 2.4 MoVam7与MoSsa1互作调控网格蛋白解聚过程 | 第122-124页 |
| 2.5 MoSwa2调控稻瘟病菌致病力 | 第124-126页 |
| 2.6 MoSwa2抑制水稻的防卫反应促进侵染菌丝扩展 | 第126-127页 |
| 2.7 MoSwa2抑制寄主ROS的产生 | 第127页 |
| 2.8 △Moswa2突变体诱导的防卫反应与ROS信号通路相关 | 第127-128页 |
| 2.9 MoSwa2调控胞外蛋白的分泌,帮助病菌规避寄主免疫反应 | 第128-129页 |
| 2.10 MoSwa2调控无毒效应分子Avr-Pia的分泌 | 第129-132页 |
| 2.11 MoSwa2调控胞外蛋白的分泌 | 第132-133页 |
| 2.12 MoVam7和MoSwa2调控胞吞过程 | 第133-134页 |
| 2.13 MoVam7和MoSwa2调控网格蛋白动态平衡 | 第134-135页 |
| 2.14 MoVam7调控Cvt途径 | 第135-136页 |
| 2.15 MoSwa2定位于囊泡上 | 第136-138页 |
| 3 讨论 | 第138-141页 |
| 参考文献 | 第141-145页 |
| 全文总结及创新点 | 第145-147页 |
| 附录一 试验常用培养基 | 第147-150页 |
| 附录二 实验所用引物 | 第150-155页 |
| 致谢 | 第155页 |
