致谢 | 第5-6页 |
摘要 | 第6-8页 |
Abstract | 第8-9页 |
1 绪论 | 第16-29页 |
1.1 前言 | 第16页 |
1.2 Cd与水稻 | 第16-18页 |
1.2.1 Cd胁迫对水稻的影响 | 第16-17页 |
1.2.2 水稻响应Cd胁迫的调节机制 | 第17-18页 |
1.3 植物类受体蛋白激酶对非生物胁迫的响应 | 第18-27页 |
1.3.1 RLK的结构特征和分类 | 第19-21页 |
1.3.2 RLK参与非生物胁迫应答 | 第21-27页 |
1.4 研究意义与主要内容 | 第27-29页 |
1.4.1 研究目的与意义 | 第27-28页 |
1.4.2 研究内容 | 第28-29页 |
2 RLK生物信息学和时序表达特征分析 | 第29-36页 |
2.1 材料和方法 | 第29-33页 |
2.1.1 生物信息学相关网站 | 第29页 |
2.1.2 试验材料和试剂 | 第29-30页 |
2.1.3 水稻植株的培养 | 第30页 |
2.1.4 水稻样品的采集 | 第30页 |
2.1.5 水稻样品总RNA的提取 | 第30-32页 |
2.1.6 RNA样品的逆转录 | 第32页 |
2.1.7 实时荧光定量PCR | 第32页 |
2.1.8 数据处理与分析 | 第32-33页 |
2.2 结果与分析 | 第33-36页 |
2.2.1 生物信息学分析 | 第33-34页 |
2.2.2 RLK的时序特异性表达 | 第34-36页 |
3 RLK过表达、RLK的RNAi转基因水稻植株对Cd胁迫的响应 | 第36-52页 |
3.1 材料和方法 | 第36-42页 |
3.1.1 试验材料 | 第36-37页 |
3.1.2 水稻植株的培养和处理 | 第37页 |
3.1.3 水稻样品采集 | 第37页 |
3.1.4 转基因株系鉴定 | 第37-38页 |
3.1.5 叶绿素含量测定 | 第38页 |
3.1.6 MDA和H_2O_2含量测定 | 第38-40页 |
3.1.7 POD、SOD、CAT活性测定 | 第40-42页 |
3.1.8 数据处理与分析 | 第42页 |
3.2 结果与分析 | 第42-50页 |
3.2.1 转基因株系鉴定 | 第42-44页 |
3.2.2 表型观察 | 第44页 |
3.2.3 叶绿素含量 | 第44页 |
3.2.4 MDA和H_2O_2含量 | 第44-47页 |
3.2.5 POD、CAT、SOD活性 | 第47-50页 |
3.3 讨论 | 第50-52页 |
4 过表达转基因水稻植株与的RNAi转基因水稻植株体内的Cd积累特征分析 | 第52-68页 |
4.1 材料和方法 | 第53-56页 |
4.1.1 试验材料和试剂 | 第53页 |
4.1.2 水稻植株的培养和处理 | 第53页 |
4.1.3 水稻植株Cd含量测定 | 第53页 |
4.1.4 水稻根和地上部亚细胞Cd含量测定 | 第53-54页 |
4.1.5 水稻样品总RNA的提取与逆转录 | 第54页 |
4.1.6 实时荧光定量PCR | 第54页 |
4.1.7 数据处理与分析 | 第54-56页 |
4.2 结果与分析 | 第56-67页 |
4.2.1 水稻根、茎和叶中Cd含量分析 | 第56-58页 |
4.2.2 水稻根和地上部亚细胞中Cd含量分析 | 第58-62页 |
4.2.3 RLK与Cd积累转运相关基因的表达分析 | 第62-67页 |
4.3 讨论 | 第67-68页 |
5 iTRAQ技术筛选水稻植株中RLK下游基因 | 第68-77页 |
5.1 材料和方法 | 第68-70页 |
5.1.1 试验材料和试剂 | 第68页 |
5.1.2 水稻植株的培养和处理 | 第68-69页 |
5.1.3 水稻样品总RNA的提取与逆转录 | 第69页 |
5.1.4 实时荧光定量PCR | 第69-70页 |
5.1.5 数据处理与分析 | 第70页 |
5.2 结果与分析 | 第70-75页 |
5.2.1 差异蛋白数 | 第70-71页 |
5.2.2 差异蛋白GO富集分析 | 第71-73页 |
5.2.3 差异蛋白KEGG富集分析 | 第73页 |
5.2.4 实时荧光定量PCR验证 | 第73-75页 |
5.3 讨论 | 第75-77页 |
6 研究总结与展望 | 第77-80页 |
6.1 研究总结 | 第77-78页 |
6.2 论文创新点 | 第78页 |
6.3 研究展望 | 第78-80页 |
参考文献 | 第80-88页 |
作者简历 | 第88页 |