| 摘要 | 第11-14页 |
| Abstract | 第14-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-48页 |
| 1 脊椎动物性别决定 | 第18-24页 |
| 1.1 哺乳类性别决定 | 第19-20页 |
| 1.2 鸟类性别决定 | 第20-21页 |
| 1.3 爬行类性别决定 | 第21-22页 |
| 1.4 两栖类性别决定 | 第22页 |
| 1.5 鱼类性别决定 | 第22-24页 |
| 2 脊椎动物性别决定通路 | 第24-38页 |
| 2.1 雄性通路 | 第26-28页 |
| 2.2 雌性通路 | 第28-38页 |
| 2.2.1 Foxl2 | 第29-35页 |
| 2.2.2 Cyp19a1a | 第35-38页 |
| 3 雌激素与雄性生殖的关系 | 第38-45页 |
| 3.1 雄性生殖系统组成 | 第39-40页 |
| 3.2 雌激素在雄性生殖系统中的作用 | 第40-44页 |
| 3.2.1 Cyp19a1在雄性生殖系统中的表达和功能 | 第40-42页 |
| 3.2.2 雌激素受体在雄性生殖系统中的表达和功能 | 第42-44页 |
| 3.3 雌激素作用机理 | 第44-45页 |
| 4 科学问题的提出和本研究目的意义 | 第45-48页 |
| 第二章 Foxl2在尼罗罗非鱼雌性性别决定中的功能研究 | 第48-66页 |
| 1 引言 | 第48-49页 |
| 2 材料与方法 | 第49-53页 |
| 2.1 实验动物 | 第49页 |
| 2.2 主要试剂 | 第49页 |
| 2.3 主要仪器 | 第49-50页 |
| 2.4 方法 | 第50-53页 |
| 2.4.1 foxl2纯合突变鱼的获得 | 第50页 |
| 2.4.2 免疫组化 | 第50页 |
| 2.4.3 Westernblot | 第50页 |
| 2.4.4 Real-timePCR | 第50-51页 |
| 2.4.5 血清类固醇激素水平测定 | 第51页 |
| 2.4.6 E2回救foxl2XX纯合突变表型 | 第51页 |
| 2.4.7 启动子分析 | 第51页 |
| 2.4.8 生殖细胞数量估计 | 第51-52页 |
| 2.4.9 统计检验 | 第52-53页 |
| 3 结果 | 第53-60页 |
| 3.1 foxl2纯合突变鱼的获得 | 第53-54页 |
| 3.2 纯合突变foxl2导致XX个体性逆转 | 第54-56页 |
| 3.3 foxl2XX纯合突变鱼中血清雌激素水平降低 | 第56-58页 |
| 3.4 E2回救Foxl2突变引起的性逆转 | 第58-59页 |
| 3.5 foxl2XX纯合突变鱼中血清雄激素水平升高 | 第59页 |
| 3.6 foxl2XX纯合突变鱼早期性腺生殖细胞数量减少 | 第59-60页 |
| 4 讨论 | 第60-64页 |
| 4.1 Foxl2是重要的雌性性别决定基因 | 第60-62页 |
| 4.2 Foxl2抑制雄性通路基因表达 | 第62页 |
| 4.3 Foxl2调节类固醇激素合成 | 第62-64页 |
| 附图 | 第64-66页 |
| 第三章 Cyp19a1a在尼罗罗非鱼雌性性别决定中的功能研究 | 第66-80页 |
| 1 引言 | 第66-67页 |
| 2 材料与方法 | 第67-69页 |
| 2.1 实验动物 | 第67页 |
| 2.2 主要试剂 | 第67页 |
| 2.3 主要仪器 | 第67页 |
| 2.4 方法 | 第67-69页 |
| 2.4.1 cyp19a1a纯合突变鱼的获得 | 第67页 |
| 2.4.2 免疫组化 | 第67页 |
| 2.4.3 Westernblot | 第67页 |
| 2.4.4 Real-timePCR | 第67-68页 |
| 2.4.5 血清E2水平测定 | 第68页 |
| 2.4.6 E2回救cyp19a1aXX纯合突变表型 | 第68页 |
| 2.4.7 生殖细胞数量估计 | 第68页 |
| 2.4.8 统计检验 | 第68-69页 |
| 3 结果 | 第69-74页 |
| 3.1 cyp19a1a纯合突变鱼的获得 | 第69-70页 |
| 3.2 cyp19a1aXX纯合突变鱼出现性逆转 | 第70-72页 |
| 3.3 E2回救Cyp19a1a缺失引起的性逆转 | 第72页 |
| 3.4 cyp19a1aXX纯合突变鱼早期性腺生殖细胞数量减少 | 第72-74页 |
| 4 讨论 | 第74-78页 |
| 4.1 Cyp19a1a在性别决定和维持中的作用 | 第74-75页 |
| 4.2 Cyp19a1a与生殖细胞命运的关系 | 第75-76页 |
| 4.3 基因突变导致罗非鱼性别决定基因和性染色体的转换 | 第76-78页 |
| 附图 | 第78-80页 |
| 第四章 Cyp19a1b在雄性尼罗罗非鱼生殖中的作用 | 第80-94页 |
| 1 引言 | 第80-81页 |
| 2 材料与方法 | 第81-83页 |
| 2.1 实验动物 | 第81页 |
| 2.2 主要试剂 | 第81页 |
| 2.3 主要仪器 | 第81页 |
| 2.4 方法 | 第81-83页 |
| 2.4.1 cyp19a1b纯合突变鱼的获得 | 第81页 |
| 2.4.2 血清类固醇激素水平测定 | 第81页 |
| 2.4.3 育性检测 | 第81-82页 |
| 2.4.4 性腺形态和表型分析 | 第82页 |
| 2.4.5 精子特征分析 | 第82页 |
| 2.4.6 Real-timePCR | 第82-83页 |
| 2.4.7 统计检验 | 第83页 |
| 3 结果 | 第83-90页 |
| 3.1 cyp19a1b纯合突变鱼的获得 | 第83-84页 |
| 3.2 纯合突变cyp19a1b导致XY个体输精管堵塞和不育 | 第84-85页 |
| 3.3 cyp19a1bXY纯合突变鱼精子发生正常 | 第85-87页 |
| 3.4 纯合突变cyp19a1b导致输精管内离子交换障碍 | 第87-88页 |
| 3.5 纯合突变cyp19a1b导致XY精巢退化 | 第88-90页 |
| 4 讨论 | 第90-94页 |
| 4.1 阻断雌激素合成引发XY罗非鱼不育 | 第90-91页 |
| 4.2 雌激素调节输精管内离子交换 | 第91页 |
| 4.3 输精管长期堵塞引发性腺退化 | 第91-94页 |
| 结论 | 第94-96页 |
| 本研究的主要创新点 | 第96-98页 |
| 本研究的不足与展望 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100-144页 |
| 致谢 | 第144-146页 |
| 在读期间发表的主要论文 | 第146-148页 |
| 在读期间参加科研情况 | 第148页 |
