| 中文摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 英文缩写词表 | 第8-11页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-16页 |
| 1.1 酸性土壤的分布与形成 | 第11页 |
| 1.2 铝毒对植物根尖细胞壁的影响 | 第11-13页 |
| 1.3 UDP-糖基转移酶基因研究进展 | 第13-15页 |
| 1.4 研究目的与意义 | 第15-16页 |
| 第2章 铝胁迫下大豆三个UGTA基因的生物信息学及表达模式分析 | 第16-28页 |
| 2.1 试验材料 | 第16-17页 |
| 2.1.1 试验材料、载体、菌种 | 第16页 |
| 2.1.2 试验药品 | 第16页 |
| 2.1.3 主要溶液的配制 | 第16页 |
| 2.1.4 试验仪器 | 第16-17页 |
| 2.2 试验方法 | 第17-22页 |
| 2.2.1 UGTA基因的生物信息学分析 | 第17页 |
| 2.2.2 大豆培养 | 第17页 |
| 2.2.3 大豆根尖RNA提取及cDNA的合成 | 第17-18页 |
| 2.2.4 实时荧光定量PCR引物设计 | 第18页 |
| 2.2.5 基因克隆及载体构建 | 第18-22页 |
| 2.2.6 重组质粒转化农杆菌Agl0和发根农杆菌K | 第22页 |
| 2.2.7 转化农杆菌菌液验证 | 第22页 |
| 2.2.8 农杆菌蘸花侵染拟南芥及过表达植株的筛选 | 第22页 |
| 2.3 试验结果及讨论 | 第22-28页 |
| 2.3.1 UGTA基因的生物信息学分析 | 第22-24页 |
| 2.3.2 铝处理下UGTA基因转录表达分析 | 第24-26页 |
| 2.3.3 克隆过程中各步的电泳检验 | 第26-28页 |
| 第3章 铝胁迫下大豆发根细胞壁提取及糖类的测定 | 第28-41页 |
| 3.1 试验材料与方法 | 第28页 |
| 3.1.1 供试材料 | 第28页 |
| 3.1.2 试验药品 | 第28页 |
| 3.1.3 主要溶液的配制 | 第28页 |
| 3.2 试验方法 | 第28-32页 |
| 3.2.1 农杆菌介导的大豆发根 | 第28-29页 |
| 3.2.2 过表达大豆发根根尖的获取 | 第29-30页 |
| 3.2.3 根尖LC-MS代谢组学初步分析 | 第30-31页 |
| 3.2.4 细胞壁的提取及多糖的测定 | 第31页 |
| 3.2.5 根尖胼胝质含量测定 | 第31页 |
| 3.2.6 木糖含量测定 | 第31-32页 |
| 3.2.7 葡萄糖含量测定 | 第32页 |
| 3.2.8 木质素含量测定 | 第32页 |
| 3.3 结果与分析 | 第32-37页 |
| 3.3.1 大豆发根检测 | 第32页 |
| 3.3.2 根尖LC-MS代谢组学初步分析 | 第32-33页 |
| 3.3.3 细胞壁多糖含量结果分析 | 第33-34页 |
| 3.3.4 胼胝质含量结果分析 | 第34页 |
| 3.3.5 木糖含量结果分析 | 第34-35页 |
| 3.3.6 葡萄糖含量结果分析 | 第35-36页 |
| 3.3.7 木质素含量结果分析 | 第36-37页 |
| 3.4 讨论 | 第37-41页 |
| 第4章 结果与展望 | 第41-43页 |
| 参考文献 | 第43-50页 |
| 作者简介 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51页 |
