| 致谢 | 第7-9页 |
| 摘要 | 第9-12页 |
| Abstract | 第12-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第21-44页 |
| 1.1 稻曲病的分布与危害 | 第21-23页 |
| 1.1.1 稻曲病的分布 | 第21-22页 |
| 1.1.2 稻曲病的危害 | 第22-23页 |
| 1.2 稻曲病菌的分类和生物学特征 | 第23-31页 |
| 1.2.1 稻曲病菌的分类 | 第23-24页 |
| 1.2.2 稻曲病菌的生物学特性 | 第24-28页 |
| 1.2.2.1 厚垣孢子 | 第25-26页 |
| 1.2.2.2 分生孢子 | 第26-27页 |
| 1.2.2.3 子囊孢子和菌核 | 第27-28页 |
| 1.2.3 稻曲病菌有性生殖相关基因的研究 | 第28页 |
| 1.2.4 稻曲病菌的遗传多样性和致病性研究 | 第28-31页 |
| 1.3 接种方法与接种适期 | 第31-33页 |
| 1.4 侵染机制 | 第33-37页 |
| 1.4.1 水稻花期穗部侵染 | 第33-35页 |
| 1.4.2 苗期系统性侵染 | 第35-37页 |
| 1.5 水稻的稻曲病抗病性 | 第37-39页 |
| 1.6 稻曲病菌的分子生物学 | 第39-42页 |
| 1.6.1 稻曲病菌的分子检测技术及功能基因研究 | 第39-41页 |
| 1.6.2 稻曲病菌与水稻的互作 | 第41-42页 |
| 1.7 稻曲病菌的防治措施 | 第42-44页 |
| 1.7.1 稻曲病的农业防治 | 第42-43页 |
| 1.7.2 稻曲病菌的药剂防治 | 第43-44页 |
| 第二章 稻曲病菌厚垣孢子越冬能力的研究 | 第44-60页 |
| 2.1 材料和方法 | 第45-48页 |
| 2.1.1 厚垣孢子种类及其存储条件 | 第45页 |
| 2.1.2 萌发处理 | 第45-48页 |
| 2.1.2.1 光照、变温和孵育天数对厚垣孢子萌发率的影响 | 第46页 |
| 2.1.2.2 室内干燥和4℃条件下保存的厚垣孢子萌发率 | 第46页 |
| 2.1.2.3 厚垣孢子在田间条件下的越冬与萌发 | 第46-47页 |
| 2.1.2.4 散落土中厚垣孢子的越冬与萌发 | 第47-48页 |
| 2.1.3 土壤中厚垣孢子形态与结构变化 | 第48页 |
| 2.2 结果 | 第48-57页 |
| 2.2.1 萌发处理 | 第48-54页 |
| 2.2.1.1 光照、温差和孵育天数对厚垣孢子萌发率的影响 | 第48-51页 |
| 2.2.1.2 不同存储时间厚垣孢子萌发率的变化 | 第51-52页 |
| 2.2.1.3 自然稻田中稻曲球上厚垣孢子的越冬和萌发 | 第52-54页 |
| 2.2.2 模拟散落土中厚垣孢子的萌发和统计 | 第54-57页 |
| 2.3 讨论 | 第57-60页 |
| 第三章 稻曲病菌菌核在中国亚热带地区稻曲病流行中的作用 | 第60-67页 |
| 3.1 材料和方法 | 第61-62页 |
| 3.1.1 不同地区菌核的调查 | 第61页 |
| 3.1.2 菌核的储存和萌发 | 第61页 |
| 3.1.3 稻曲病菌的分子检测 | 第61-62页 |
| 3.2 结果 | 第62-65页 |
| 3.2.1 不同地区菌核形成调查 | 第62-64页 |
| 3.2.2 菌核在实验室内和田间的存活能力 | 第64-65页 |
| 3.3 讨论 | 第65-67页 |
| 第四章 稻曲病菌接种条件的优化 | 第67-74页 |
| 4.1 材料与方法 | 第67-69页 |
| 4.1.1 实验菌株、水稻品种 | 第67页 |
| 4.1.2 接种体制备 | 第67-68页 |
| 4.1.3 水稻的种植 | 第68页 |
| 4.1.4 室内人工接种 | 第68页 |
| 4.1.5 影响室内发病的主要环境因子 | 第68页 |
| 4.1.6 调查方法 | 第68-69页 |
| 4.2 结果与分析 | 第69-72页 |
| 4.2.1 接种方法的优化 | 第69页 |
| 4.2.2 不同水稻叶枕距接种的效果 | 第69-70页 |
| 4.2.3 不同菌株的致病力 | 第70-71页 |
| 4.2.4 小结 | 第71-72页 |
| 4.3 讨论 | 第72-74页 |
| 第五章 稻曲病菌侵染水稻和大麦花丝的细胞生物学研究 | 第74-90页 |
| 5.1 材料与方法 | 第74-78页 |
| 5.1.1 病原菌,植物和接种方法 | 第74-75页 |
| 5.1.2 光学显微镜(LM)的制样与观察 | 第75页 |
| 5.1.3 早期侵染稻曲球的样品采集 | 第75-76页 |
| 5.1.4 扫描电镜的制样与观察 | 第76页 |
| 5.1.5 透射电子显微镜(TEM)的制样与观察 | 第76页 |
| 5.1.6 纤维素和β-1,3-葡聚糖的标记 | 第76-77页 |
| 5.1.7 稻曲病菌的验证 | 第77-78页 |
| 5.1.8 常规PCR | 第78页 |
| 5.2 结果 | 第78-88页 |
| 5.2.1 稻曲病菌菌株与大麦的互作 | 第78-82页 |
| 5.2.2 大麦和水稻花丝的超微结构和细胞化学 | 第82-88页 |
| 5.3 讨论 | 第88-90页 |
| 第六章 稻曲病菌侵染水稻胚根的细胞学研究 | 第90-108页 |
| 6.1 材料与方法 | 第91-95页 |
| 6.1.1 菌株和接种液准备 | 第91页 |
| 6.1.2 水稻种子及催芽 | 第91-92页 |
| 6.1.3 病原菌的接种与取样 | 第92页 |
| 6.1.4 光镜及激光共聚焦显微镜的制样与观察 | 第92-93页 |
| 6.1.5 透射电子显微镜的制样与观察 | 第93页 |
| 6.1.6 CTAB法提取总DNA | 第93-94页 |
| 6.1.7 DNA分析 | 第94-95页 |
| 6.1.7.1 PCR扩增 | 第94-95页 |
| 6.1.7.2 Real Time PCR | 第95页 |
| 6.2 结果与分析 | 第95-104页 |
| 6.2.1 根部接种稻曲病菌的验证 | 第95-96页 |
| 6.2.2 稻曲病菌对水稻苗期生长的影响 | 第96-98页 |
| 6.2.3 稻曲病菌根部侵染的细胞学观察 | 第98-104页 |
| 6.2.4 稻曲病菌菌株对水稻胚芽鞘和叶片的侵染 | 第104页 |
| 6.3 讨论 | 第104-108页 |
| 第七章 稻曲病菌与水稻互作转录组分析 | 第108-124页 |
| 7.1 材料与方法 | 第108-109页 |
| 7.1.1 菌株和水稻品种 | 第108页 |
| 7.1.2 水稻的种植 | 第108页 |
| 7.1.3 田间人工接种 | 第108页 |
| 7.1.4 测序分析 | 第108-109页 |
| 7.2 结果与分析 | 第109-120页 |
| 7.2.1 水稻与稻曲病菌互作转录组分析 | 第109-113页 |
| 7.2.2 抗病性相关基因 | 第113-116页 |
| 7.2.3 糖代谢相关基因 | 第116-120页 |
| 7.3 讨论 | 第120-124页 |
| 结论与展望 | 第124-126页 |
| 结论 | 第124页 |
| 展望 | 第124-126页 |
| 参考文献 | 第126-147页 |
| 附录:试剂配方 | 第147-149页 |
| 缓冲液配方 | 第147-148页 |
| 1. 0.1mol/L磷酸缓冲液 | 第147-148页 |
| 固定液配方 | 第148-149页 |
| 1. 戊二醛固定液 | 第148页 |
| 2. 四氧化锇固定液 | 第148-149页 |
| 攻读博士学位期间完成的论文 | 第149-150页 |
