| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 缩略词表 | 第10-14页 |
| 第一章 文献综述与选题依据 | 第14-34页 |
| 1.1 心肌细胞Ca~(2+)调控过程 | 第14-16页 |
| 1.1.1 心肌细胞Ca~(2+)瞬变 | 第14-15页 |
| 1.1.2 心梗心肌细胞Ca~(2+)调控障碍 | 第15-16页 |
| 1.2 运动与心肌细胞凋亡 | 第16-20页 |
| 1.2.1 细胞凋亡及相关机制 | 第16-19页 |
| 1.2.2 运动与细胞凋亡 | 第19-20页 |
| 1.3 运动对缺血心脏的保护效应 | 第20-22页 |
| 1.3.1 缺血心脏研究 | 第20-21页 |
| 1.3.2 运动对缺血心脏保护效应 | 第21-22页 |
| 1.4 心磷脂生物学表征与代谢调控 | 第22-28页 |
| 1.4.1 心磷脂的生物学表征 | 第22-23页 |
| 1.4.2 心磷脂的重构与病态重构 | 第23-25页 |
| 1.4.3 心磷脂的代谢调控 | 第25-27页 |
| 1.4.4 心磷脂与细胞凋亡 | 第27-28页 |
| 1.5 心磷脂病态重塑与慢性疾病 | 第28-30页 |
| 1.5.1 巴氏综合症 | 第28-29页 |
| 1.5.2 心血管疾病相关研究 | 第29-30页 |
| 1.5.3 糖尿病和肥胖 | 第30页 |
| 1.6 运动与CL | 第30-32页 |
| 1.6.1 运动通过降低ROS水平可能改善CL的病态重塑 | 第30-31页 |
| 1.6.2 运动改善CL的病态重塑的可能机制 | 第31-32页 |
| 1.7 选题依据 | 第32-34页 |
| 1.7.1 选题思路 | 第32页 |
| 1.7.2 实验设计思路 | 第32-34页 |
| 第二章 大鼠心梗急性期心肌ALCAT1表征 | 第34-46页 |
| 2.1 材料与方法 | 第34-38页 |
| 2.1.1 主要仪器和试剂 | 第34页 |
| 2.1.2 实验动物分组和心肌梗死模型制备及心功能测定 | 第34-35页 |
| 2.1.3 取材及样品制备 | 第35-36页 |
| 2.1.4 心肌Masson染色方法 | 第36页 |
| 2.1.5 心肌lclat1的RT-qPCR实验方法 | 第36-37页 |
| 2.1.6 心肌局部和血清ALCAT1的WB蛋白印迹实验方法 | 第37-38页 |
| 2.1.7 心梗大鼠血清CK、CKMB和LDH测定方法 | 第38页 |
| 2.1.8 数据采集与统计学处理 | 第38页 |
| 2.2 实验结果 | 第38-42页 |
| 2.2.1 心梗大鼠心肌局部和血清ALCAT1基因和蛋白表达变化 | 第38-39页 |
| 2.2.2 心梗大鼠血清CK、CKMB及LDH检测结果 | 第39-40页 |
| 2.2.3 心梗大鼠心肌间质胶原观察与心功能测定结果 | 第40-42页 |
| 2.3 讨论与分析 | 第42-44页 |
| 2.3.1 心肌梗死上调ALCAT1基因及蛋白表达 | 第42-43页 |
| 2.3.2 心梗大鼠血清CK、CKMB和LDH变化特征分析 | 第43-44页 |
| 2.3.3 心梗大鼠心肌间质胶原及心功能测定结果 | 第44页 |
| 2.4 小结 | 第44-46页 |
| 第三章 有氧运动对心梗大鼠ALCAT1表征的影响及其与心功能改善的关系 | 第46-58页 |
| 3.1 材料与方法 | 第46-48页 |
| 3.1.1 主要仪器和试剂 | 第46-47页 |
| 3.1.2 动物分组、心梗模型制备和运动方案 | 第47页 |
| 3.1.3 心功能测定、取材及样品制备、心肌Masson染色与RT-qPCR实验 | 第47页 |
| 3.1.4 WB蛋白印迹实验和Elisa检测方法 | 第47页 |
| 3.1.5 数据采集与统计学处理 | 第47-48页 |
| 3.2 实验结果 | 第48-54页 |
| 3.2.1 有氧运动对心梗大鼠心肌局部和血清ALCAT1的影响 | 第48-49页 |
| 3.2.2 有氧运动降低心梗大鼠心肌局部和循环氧化应激水平 | 第49-51页 |
| 3.2.3 有氧运动降低心梗大鼠心肌功能性损伤 | 第51-52页 |
| 3.2.4 有氧运动降低心梗大鼠心肌胶原纤维化,改善心功能 | 第52-54页 |
| 3.3 讨论与分析 | 第54-56页 |
| 3.3.1 有氧运动下调心梗大鼠心肌局部和血清ALCAT1水平 | 第54-55页 |
| 3.3.2 有氧运动降低心梗大鼠心肌和循环的氧化应激水平 | 第55页 |
| 3.3.3 有氧运动降低心梗大鼠心肌损伤,提高心功能 | 第55-56页 |
| 3.4 小结 | 第56-58页 |
| 第四章 有氧运动对心梗大鼠心肌细胞钙瞬变与细胞凋亡的影响 | 第58-72页 |
| 4.1 材料与方法 | 第58-61页 |
| 4.1.1 主要仪器和试剂 | 第58-59页 |
| 4.1.2 实验动物分组、心肌梗死模型制备与大鼠运动训练方案、取材及样品制备(同第三章) | 第59页 |
| 4.1.3 Caspase3活性检测试剂盒 | 第59页 |
| 4.1.4 WB蛋白印迹实验方法 | 第59页 |
| 4.1.5 心肌细胞急性分离、心肌细胞钙瞬变及收缩功能测定 | 第59-61页 |
| 4.1.6 数据采集与统计学处理 | 第61页 |
| 4.2 实验结果 | 第61-67页 |
| 4.2.1 有氧运动抑制心梗大鼠心肌凋亡 | 第61-62页 |
| 4.2.2 大鼠单个心肌细胞钙瞬变和心肌细胞收缩同步测定结果 | 第62-63页 |
| 4.2.3 有氧运动改善心梗大鼠单个心肌细胞钙瞬变 | 第63-65页 |
| 4.2.4 有氧运动改善心梗大鼠单个心肌细胞的收缩功能 | 第65-66页 |
| 4.2.5 有氧运动显著上调心梗心肌PI3K-Akt-PKG-PLN/SERCA2a通路 | 第66-67页 |
| 4.3 讨论与分析 | 第67-70页 |
| 4.3.1 有氧运动抑制心梗大鼠心肌凋亡 | 第67-68页 |
| 4.3.2 有氧运动改善心梗大鼠心肌细胞的钙瞬变 | 第68-69页 |
| 4.3.3 有氧运动改善心梗大鼠心肌细胞的收缩与舒张能力 | 第69-70页 |
| 4.4 小结 | 第70-72页 |
| 全文总结 | 第72-76页 |
| 参考文献 | 第76-104页 |
| 致谢 | 第104-106页 |
| 攻读学位期间的科研成果 | 第106页 |
