| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 主要中英文名词及英文缩写 | 第10-16页 |
| 第1章 绪论 | 第16-42页 |
| 1.1 小分子配体概述 | 第16-17页 |
| 1.2 小分子配体-生物大分子相互作用 | 第17-24页 |
| 1.2.1 小分子配体-血浆蛋白质相互作用 | 第17-18页 |
| 1.2.2 小分子配体-酶相互作用 | 第18页 |
| 1.2.3 小分子配体-受体相互作用 | 第18-19页 |
| 1.2.4 小分子配体-脱氧核糖核酸分子相互作用 | 第19-22页 |
| 1.2.5 小分子配体-核糖核酸分子相互作用 | 第22-24页 |
| 1.3 本研究相关纳米粒子简介 | 第24-32页 |
| 1.3.1 贵金属相关纳米粒子 | 第24-26页 |
| 1.3.2 量子点 | 第26-29页 |
| 1.3.3 纳米片层材料 | 第29-32页 |
| 1.4 荧光分析法概述 | 第32-35页 |
| 1.4.1 直接测定荧光法 | 第32页 |
| 1.4.2 荧光猝灭或增强法 | 第32-33页 |
| 1.4.3 比率荧光法 | 第33-34页 |
| 1.4.4 能量转移荧光分析法 | 第34页 |
| 1.4.5 荧光偏振/各向异性分析法 | 第34-35页 |
| 1.4.6 其他荧光分析法 | 第35页 |
| 1.5 HIV-1多肽与RNA简介 | 第35-39页 |
| 1.5.1 艾滋病介绍 | 第35-36页 |
| 1.5.2 HIV-1反式激活因子 | 第36-37页 |
| 1.5.3 HIV-1多肽-RNA相互作用拮抗剂 | 第37-39页 |
| 1.6 本论文研究内容和研究目的 | 第39-42页 |
| 第2章 荧光配体ICR 191与HIV TAR RNA相互作用探究 | 第42-60页 |
| 2.1 引言 | 第42-43页 |
| 2.2 实验部分 | 第43-46页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第43页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第43页 |
| 2.2.3 荧光光谱测定分析 | 第43-45页 |
| 2.2.4 圆二色光谱测定分析 | 第45-46页 |
| 2.2.5 质谱测定分析 | 第46页 |
| 2.2.6 分子对接模拟 | 第46页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第46-58页 |
| 2.3.0 荧光配体ICR 191激发与发射光谱 | 第46-47页 |
| 2.3.1 ICR 191与TAR RNA结合分析 | 第47-49页 |
| 2.3.2 Tat多肽及新霉素B荧光取代分析 | 第49-51页 |
| 2.3.3 圆二色光谱法确证ICR 191-TAR RNA相互作用 | 第51-52页 |
| 2.3.4 质谱法确证ICR 191-TAR RNA相互作用 | 第52-53页 |
| 2.3.5 模拟分子对接理论验证ICR 191-TAR RNA相互作用 | 第53-54页 |
| 2.3.6 使用ICR 191为荧光指示剂初步建立Tat拮抗剂荧光筛选模型 | 第54-58页 |
| 2.4 本章小结 | 第58-60页 |
| 第3章 以半导体量子点为参比比率荧光法研究ICR 191-RRE RNA相互作用 | 第60-78页 |
| 3.1 引言 | 第60-61页 |
| 3.2 实验部分 | 第61-65页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第61页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第61页 |
| 3.2.3 QD@SiO_2的合成 | 第61-62页 |
| 3.2.4 紫外光谱测定分析 | 第62页 |
| 3.2.5 荧光光谱测定分析 | 第62-65页 |
| 3.2.6 圆二色光谱测定分析 | 第65页 |
| 3.2.7 质谱测定分析 | 第65页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第65-76页 |
| 3.3.1 ICR 191与QD@SiO_2之间荧光干扰试验 | 第65-69页 |
| 3.3.2 ICR 191与RRE RNA结合分析 | 第69-70页 |
| 3.3.3 Rev多肽荧光取代分析 | 第70-72页 |
| 3.3.4 圆二色光谱及质谱测定分析 | 第72-73页 |
| 3.3.5 使用ICR 191为荧光指示剂评价其他药物与RRE RNA相互作用 | 第73-76页 |
| 3.4 本章小结 | 第76-78页 |
| 第4章 应用DNA保护荧光银纳米簇研究米托蒽醌-HIV-1 RNA相互作用 | 第78-92页 |
| 4.1 引言 | 第78-79页 |
| 4.2 实验部分 | 第79-82页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第79页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第79页 |
| 4.2.3 AgNCs制备 | 第79-80页 |
| 4.2.4 紫外光谱测定分析 | 第80页 |
| 4.2.5 荧光光谱测定分析 | 第80-82页 |
| 4.2.6 圆二色光谱测定分析 | 第82页 |
| 4.2.7 质谱测定分析 | 第82页 |
| 4.2.8 透射电镜表征 | 第82页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第82-90页 |
| 4.3.1 AgNCs的荧光光谱性质 | 第82-83页 |
| 4.3.2 MTX对AgNCs荧光光谱影响分析 | 第83-86页 |
| 4.3.3 MTX-HIV RNA相互作用荧光分析 | 第86-89页 |
| 4.3.4 MTX-HIV RNA相互作用确证分析 | 第89-90页 |
| 4.4 本章小结 | 第90-92页 |
| 第5章 以普罗黄素为指示剂建立氧化石墨烯辅助的荧光偏振Rev多肽拮抗剂筛选模型 | 第92-104页 |
| 5.1 引言 | 第92-93页 |
| 5.2 实验部分 | 第93-95页 |
| 5.2.1 实验试剂 | 第93页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第93页 |
| 5.2.3 GO的制备 | 第93-94页 |
| 5.2.4 紫外光谱测定分析 | 第94页 |
| 5.2.5 配体-RNA相互作用分析 | 第94页 |
| 5.2.6 荧光偏振测定分析 | 第94-95页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第95-102页 |
| 5.3.1 Pro-RRE RNA相互作用分析 | 第95-96页 |
| 5.3.2 GO辅助Rev多肽拮抗剂荧光偏振筛选模型 | 第96-98页 |
| 5.3.3 GO对FP变化影响研究 | 第98-99页 |
| 5.3.4 Rev多肽与Pro竞争性研究 | 第99-101页 |
| 5.3.5 使用模型药物对荧光偏振筛选模型进行评价 | 第101-102页 |
| 5.4 本章小结 | 第102-104页 |
| 第6章 基于普罗黄素-DNA相互作用的MnO_2纳米片层辅助荧光偏振Ag~+传感器 | 第104-116页 |
| 6.1 引言 | 第104-105页 |
| 6.2 实验部分 | 第105-107页 |
| 6.2.1 实验试剂 | 第105页 |
| 6.2.2 实验仪器 | 第105页 |
| 6.2.3 MnO_2纳米片层制备 | 第105-106页 |
| 6.2.4 Ag~+检测 | 第106页 |
| 6.2.5 荧光偏振测定分析 | 第106页 |
| 6.2.6 紫外光谱测定分析 | 第106页 |
| 6.2.7 圆二色光谱测定分析 | 第106-107页 |
| 6.2.8 X射线衍射表征 | 第107页 |
| 6.2.9 电子显微镜表征 | 第107页 |
| 6.2.10 Zeta电位表征 | 第107页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第107-114页 |
| 6.3.1 MnO_2纳米片层材料表征结果 | 第107-109页 |
| 6.3.2 MnO_2纳米片层辅助荧光偏振传感器建立 | 第109页 |
| 6.3.3 MnO_2纳米片层用量优化 | 第109-110页 |
| 6.3.4 Ag~+检测灵敏度和选择性考察 | 第110-112页 |
| 6.3.5 实际样品应用 | 第112页 |
| 6.3.6 MnO_2纳米片层辅助荧光偏振传感器偏振增强机制探究 | 第112-114页 |
| 6.4 本章小结 | 第114-116页 |
| 第7章 基于共聚焦荧光相关光谱学研究配体-DNA相互作用 | 第116-126页 |
| 7.1 引言 | 第116-118页 |
| 7.2 实验部分 | 第118-120页 |
| 7.2.1 实验试剂 | 第118-119页 |
| 7.2.2 实验仪器 | 第119页 |
| 7.2.3 配体-DNA相互作用分析 | 第119页 |
| 7.2.4 基于荧光共聚焦显微镜进行FCS测定 | 第119-120页 |
| 7.3 结果与讨论 | 第120-124页 |
| 7.3.1 基于FCS进行罗丹明b-DNA相互作用研究 | 第120-122页 |
| 7.3.2 基于FCS进行USN-DNA相互作用研究 | 第122-124页 |
| 7.4 本章小结 | 第124-126页 |
| 第8章 结论 | 第126-128页 |
| 参考文献 | 第128-156页 |
| 致谢 | 第156-158页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第158页 |
