| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 引言 | 第11-12页 |
| 文献综述 | 第12-21页 |
| 1 控制花器官发育的ABC模型及其发展 | 第12-14页 |
| 1.1 ABC模型 | 第12页 |
| 1.2 ABCD模型 | 第12页 |
| 1.3 ABCDE模型 | 第12-13页 |
| 1.4 四因子模型 | 第13-14页 |
| 2 水稻MADS-box基因研究进展 | 第14页 |
| 2.1 MADS-box蛋白的结构 | 第14页 |
| 2.2 MADS-box基因在水稻花发育中的作用 | 第14页 |
| 3 DL基因研究进展 | 第14-21页 |
| 3.1 YABBY基因家族 | 第14-17页 |
| 3.2 DL基因突变体及研究进展 | 第17-21页 |
| 3.2.1 已报道的DL突变体及其表型 | 第17-18页 |
| 3.2.2 DL基因的功能 | 第18-21页 |
| 材料与方法 | 第21-25页 |
| 1 植物材料 | 第21页 |
| 1.1 突变体材料 | 第21页 |
| 1.2 定位群体及突变体池 | 第21页 |
| 2 实验方法 | 第21-25页 |
| 2.1 形态分析 | 第21-22页 |
| 2.1.1 扫描电镜 | 第21页 |
| 2.1.2 石蜡切片 | 第21-22页 |
| 2.1.3 花粉活力测定 | 第22页 |
| 2.2 连锁分析与测序 | 第22-23页 |
| 2.2.1 连锁分析与基因定位 | 第22页 |
| 2.2.2 引物设计 | 第22页 |
| 2.2.3 PCR扩增 | 第22-23页 |
| 2.2.4 序列分析及测序 | 第23页 |
| 2.3 功能分析 | 第23-25页 |
| 2.3.1 RT-PCR | 第23-24页 |
| 2.3.2 实时荧光定量PCR | 第24-25页 |
| 结果与分析 | 第25-34页 |
| 1 dl-5突变体的形态特征 | 第25-30页 |
| 1.1 dl-5及其杂合体叶片的结构 | 第25-27页 |
| 1.2 dl-5花器官的结构 | 第27-30页 |
| 2 dl-5目的基因定位 | 第30-31页 |
| 2.1 初步定位 | 第30页 |
| 2.2 精细定位 | 第30-31页 |
| 3 dl-5候选目的基因的确定 | 第31-32页 |
| 4 DL-5的表达与功能分析及蛋白结构分析 | 第32-34页 |
| 4.1 dl-5开花期异化雌蕊中相关基因的表达 | 第32-33页 |
| 4.2 DL-5蛋白结构分析 | 第33-34页 |
| 讨论 | 第34-36页 |
| 参考文献 | 第36-41页 |
| 附录 | 第41-48页 |
| 1 本研究所用的其他实验方法 | 第41-45页 |
| 1.1 SDS大量提取法提取水稻DNA | 第41页 |
| 1.2 SDS小量提取法提取水稻DNA | 第41-42页 |
| 1.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第42-43页 |
| 1.4 大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第43页 |
| 1.5 大肠杆菌细胞热激法转化 | 第43页 |
| 1.6 Trizol法提取水稻总RNA(叶片、茎尖、幼穗) | 第43-44页 |
| 1.7 试剂盒提取水稻总RNA(QIAGEN,RNeasy Plant Mini Kit(50)) | 第44-45页 |
| 2 部分实验方法所用试剂配方 | 第45-46页 |
| 2.1 DNA提取试剂配方 | 第45页 |
| 2.2 聚丙烯酰胺凝胶电泳试剂配方 | 第45-46页 |
| 2.3：LB培养基的配制 | 第46页 |
| 3 花器官特征基因定量PCR引物 | 第46页 |
| 4 DL-5 cDNA序列比对结果 | 第46-48页 |
| 致谢 | 第48页 |