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基于三维光子晶体微球流式芯片的真菌毒素高通量检测技术研究

摘要第4-5页
Abstract第5-6页
第1章 绪论第12-23页
    1.1 研究背景第12-16页
        1.1.1 黄曲霉菌与黄曲霉毒素第12-14页
        1.1.2 橘青霉与橘青霉毒素第14-15页
        1.1.3 串珠镰刀菌与伏马毒素第15-16页
    1.2 黄曲霉毒素的检测方法第16页
        1.2.1 薄层层析法第16页
        1.2.2 色谱法第16页
        1.2.3 免疫化学分析方法第16页
    1.3 目前的研究进展第16-17页
    1.4 本课题研究的意义、目的和内容第17-18页
        1.4.1 本课题研究的意义、目的第17-18页
        1.4.2 研究内容第18页
    1.5 光子晶体简介及其制作方法第18-23页
        1.5.1 纳米材料及其特性第19-20页
            1.5.1.1 表面效应(Surface Effect)第19页
            1.5.1.2 体积效应(Volume Effect)第19-20页
            1.5.1.3 量子尺寸效应第20页
        1.5.2 光子晶体简介第20-23页
            1.5.2.1 精密机械加工法第20-21页
            1.5.2.2 物理或化学气相沉积法第21页
            1.5.2.3 胶体粒子自组装第21-22页
                1.5.2.3.1 重力场下的自组装第21页
                1.5.2.3.2 离心力场下的自组装第21页
                1.5.2.3.3 利用胶体粒子的表面电荷进行组装第21-22页
            1.5.2.4 模版自组装法第22页
            1.5.2.5 其它方法第22-23页
第2章 光子晶体微球的制备及化学修饰第23-29页
    2.1 实验材料、试剂和仪器第23页
        2.1.1 实验材料第23页
        2.1.2 所用试剂第23页
        2.1.3 实验所用仪器第23页
    2.2 单分散二氧化硅微球乳液的制备第23-24页
        2.2.1 二氧化硅乳液的制备方法第24页
            2.2.1.1 A组分溶液的配置第24页
            2.2.1.2 B组分溶液的配制第24页
            2.2.1.3 二氧化硅乳液制备第24页
    2.3 二氧化硅光子晶体微球的制备第24-25页
    2.4 光子晶体微球的化学修饰第25-26页
        2.4.1 修饰羟基第25-26页
        2.4.2 修饰环氧基第26页
    2.5 结果与讨论第26-28页
        2.5.1 二氧化硅单分散乳液的表征第26-27页
        2.5.2 光子晶体微球的表征第27-28页
    2.6 小结第28-29页
第3章 谷物中黄曲霉毒素的检测第29-44页
    3.1 常用抗体标记方法第29-30页
        3.1.1 荧光免疫技术第29页
        3.1.2 放射免疫技术第29页
        3.1.3 酶免疫技术第29-30页
    3.2 常用抗体标记荧光染料的特性及其应用第30-31页
        3.2.1 FITC简介第30页
        3.2.2 FITC标记原理第30-31页
        3.2.3 FITC标记抗体应用第31页
    3.3 实验材料、试剂和仪器第31-32页
        3.3.1 实验材料第31页
        3.3.2 所用试剂第31-32页
        3.3.3 实验所用仪器第32页
    3.4 黄曲霉毒素B_1单克隆抗体的标记第32-33页
        3.4.1 黄曲霉毒素B_1单克隆抗体的脱盐第32页
        3.4.2 抗体标记流程第32页
        3.4.3 标记抗体蛋白的分离纯化第32-33页
    3.5 反应条件优化第33-34页
        3.5.1 不同包被浓度的影响第33页
        3.5.2 反应时间的影响第33页
        3.5.3 反应温度的影响第33-34页
        3.5.4 光子晶体微球修饰温度的影响第34页
    3.6 谷物中黄曲霉毒素的检测第34-35页
        3.6.1 标准曲线的制作第34页
        3.6.2 特异性分析第34-35页
            3.6.2.1 四种毒素标准溶液的配制第34页
            3.6.2.2 交叉反应第34-35页
        3.6.3 样品处理第35页
        3.6.4 样品提取第35页
        3.6.5 回收率的测定第35页
    3.7 结果与讨论第35-43页
        3.7.1 光子晶体微球的表征第36页
        3.7.2 FITC-单克隆抗体蛋白结合物的鉴定第36-37页
            3.7.2.1 蛋白浓度的计算第36-37页
            3.7.2.2 Molar Ratio(F/P)的计算第37页
        3.7.3 三种标记抗体的参数汇总第37页
        3.7.4 反应条件的优化第37-41页
            3.7.4.1 包被浓度的优化第37-39页
            3.7.4.2 反应时间的优化第39-40页
            3.7.4.3 反应温度的优化第40页
            3.7.4.4 光子晶体微球修饰温度的优化第40-41页
        3.7.5 标准曲线的制作第41-42页
        3.7.6 特异性分析第42-43页
        3.7.7 谷物样品回收率的测定第43页
    3.8 小结第43-44页
第4章 谷物中真菌毒素的多重检测第44-55页
    4.1 实验材料、试剂和仪器第44-45页
        4.1.1 实验材料第44页
        4.1.2 主要试剂第44页
        4.1.3 实验所用仪器第44-45页
    4.2 三种光子晶体微球的制备第45页
    4.3 标准工作液的配制第45页
        4.3.1 AFB_1工作液的配制第45页
        4.3.2 CIT工作液的配制第45页
        4.3.3 FB1工作液的配制第45页
    4.4 多重检测标准曲线的制作第45-46页
    4.5 多重检测特异性第46页
    4.6 样品掺杂第46页
    4.7 样品提取及回收率的测定第46-47页
        4.7.1 样品提取第46-47页
        4.7.2 回收率的测定第47页
    4.8 结果与讨论第47-54页
        4.8.1 光子晶体微球的编码第47-48页
        4.8.2 多重检测特异性第48-50页
        4.8.3 多重检测标准曲线第50-53页
            4.8.3.1 黄曲霉毒素B_1的标准曲线第50-51页
            4.8.3.2 橘青霉毒素的标准曲线第51-52页
            4.8.3.3 伏马毒素的标准曲线第52-53页
        4.8.4 多重检测回收率第53-54页
    4.9 小结第54-55页
全文总结第55页
论文创新点第55页
展望第55-56页
参考文献第56-63页
在读期间发表的学术论文及研究成果第63-64页
致谢第64页

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