摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5页 |
中英文对照及英文缩写词表 | 第6-9页 |
第一章 前言 | 第9-18页 |
1.1 多糖的研究进展 | 第9-13页 |
1.1.1 多糖的概述 | 第9页 |
1.1.2 多糖的提取方法 | 第9-10页 |
1.1.3 多糖的分离纯化方法 | 第10-11页 |
1.1.4 多糖结构鉴定及分析方法 | 第11-12页 |
1.1.5 多糖的活性研究 | 第12-13页 |
1.2 半乳聚糖来源、结构与功能 | 第13-14页 |
1.2.1 半乳聚糖来源及结构 | 第13-14页 |
1.2.2 半乳聚糖活性 | 第14页 |
1.3 半乳寡糖研究进展 | 第14-17页 |
1.3.1 半乳寡糖的来源 | 第14-15页 |
1.3.2 半乳寡糖的生理活性 | 第15-16页 |
1.3.3 半乳凝素3的抑制剂研究进展 | 第16-17页 |
1.4 本项目选题依据及研究意义 | 第17-18页 |
第二章 酶解法制备半乳寡糖 | 第18-35页 |
2.1 材料、试剂及仪器 | 第18-20页 |
2.1.1 材料及试剂 | 第18-19页 |
2.1.2 仪器 | 第19-20页 |
2.2 实验方法 | 第20-23页 |
2.2.1 酶解P-Galactan制备半乳寡糖条件的优化 | 第20页 |
2.2.2 酶解MCP-N制备M-Galactan | 第20页 |
2.2.3 酶解M-Galactan制备半乳寡糖条件的优化 | 第20页 |
2.2.4 酶解P-Galactan制备半乳寡糖 | 第20页 |
2.2.5 酶解M-Galactan制备半乳寡糖 | 第20-21页 |
2.2.6 糖含量测定 | 第21页 |
2.2.7 单糖组成分析 | 第21-22页 |
2.2.8 薄层色谱(TLC)检测寡糖聚合度 | 第22页 |
2.2.9 凝胶柱层析测定寡糖的分子量和均一性 | 第22页 |
2.2.10 高效液相色谱(HPLC)检测寡糖聚合度 | 第22页 |
2.2.11 红细胞凝集实验 | 第22-23页 |
2.3 实验结果 | 第23-33页 |
2.3.1 不同聚合度半乳寡糖的检测方法 | 第23-26页 |
2.3.2 酶解P-Galactan制备半乳寡糖条件优化 | 第26-28页 |
2.3.3 酶解M-Galactan制备半乳寡糖条件优化 | 第28-29页 |
2.3.4 酶解P-Galactan制备半乳寡糖的结果 | 第29-31页 |
2.3.5 酶解M-Galactan制备半乳寡糖的结果 | 第31-33页 |
2.3.6 半乳寡糖对Gal-3 的抑制活性 | 第33页 |
2.4 本章小结 | 第33-35页 |
第三章 部分酸水解法制备半乳寡糖 | 第35-49页 |
3.1 材料试剂及仪器 | 第35-37页 |
3.1.1 材料及试剂 | 第35-36页 |
3.1.2 仪器 | 第36-37页 |
3.2 实验方法 | 第37-38页 |
3.2.1 部分酸水解法制备半乳寡糖条件的优化 | 第37页 |
3.2.2 制备M-Galactan部分酸水解产物 | 第37页 |
3.2.3 制备P-Galactan部分酸水解 | 第37-38页 |
3.2.4 糖含量测定 | 第38页 |
3.2.5 单糖组成分析 | 第38页 |
3.2.6 凝胶柱层析测定寡糖的分子量和均一性 | 第38页 |
3.2.7 高效凝胶渗透色谱(HPGPC)测定分子量及均一性 | 第38页 |
3.2.8 高效液相色谱(HPLC)检测寡糖聚合度 | 第38页 |
3.2.9 红细胞凝集实验 | 第38页 |
3.3 实验结果 | 第38-48页 |
3.3.1 部分酸水解法制备半乳寡糖条件优化 | 第38-39页 |
3.3.2 部分酸水解M-Galactan制备半乳寡糖 | 第39-41页 |
3.3.3 部分酸水解P-Galactan制备半乳寡糖 | 第41-47页 |
3.3.4 部分酸水解制备不同聚合度的半乳寡糖对 Gal-3 的抑制活性 | 第47-48页 |
3.4 本章小结 | 第48-49页 |
结论 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-54页 |
致谢 | 第54页 |