| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 中英文缩写 | 第8-9页 |
| 第一章 引言 | 第9-20页 |
| 1.1 核酸疫苗 | 第9-11页 |
| 1.1.1 核酸疫苗的作用机理及免疫方法 | 第9-10页 |
| 1.1.2 核酸疫苗与传统疫苗相比的优势 | 第10页 |
| 1.1.3 核酸疫苗自身的局限性 | 第10-11页 |
| 1.2 疫苗佐剂及其分类 | 第11-13页 |
| 1.2.1 佐剂概述 | 第11页 |
| 1.2.2 铝盐佐剂 | 第11-12页 |
| 1.2.3 脂质体 | 第12页 |
| 1.2.4 细胞因子 | 第12页 |
| 1.2.5 乳化油 | 第12-13页 |
| 1.2.6 细菌的CpGDNA | 第13页 |
| 1.3 新一代的免疫佐剂—人参皂苷 | 第13-18页 |
| 1.3.1 人参皂苷的分类 | 第13-15页 |
| 1.3.2 人参皂苷对免疫系统的影响 | 第15-17页 |
| 1.3.3 人参皂苷的免疫佐剂活性与其结构的关系 | 第17-18页 |
| 1.4 白色念珠菌简述 | 第18-19页 |
| 1.5 本研究的目的、内容及意义 | 第19-20页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第20-36页 |
| 2.1 材料 | 第20-22页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第20页 |
| 2.1.2 核酸疫苗 | 第20页 |
| 2.1.3 免疫佐剂 | 第20页 |
| 2.1.4 试剂和仪器 | 第20-22页 |
| 2.2 方法 | 第22-36页 |
| 2.2.1 分组和免疫 | 第22页 |
| 2.2.2 核酸疫苗pD-HSP90C的制备 | 第22-27页 |
| 2.2.3 重组蛋白rP-HSP90C的制备 | 第27-30页 |
| 2.2.4 Western Blot检测抗体特异性 | 第30-33页 |
| 2.2.5 间接ELISA法检测抗体滴度 | 第33-35页 |
| 2.2.6 ELISA试剂盒检测小鼠血清中IL-2 与IL-4 的含量 | 第35页 |
| 2.2.7 数据分析 | 第35-36页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第36-46页 |
| 3.1 核酸疫苗pD-HSP90C的酶切验证 | 第36-37页 |
| 3.2 重组蛋白rP-HSP90C的分离纯化结果 | 第37页 |
| 3.3 人参皂苷Rb1、Rb2 及Rg3 作为免疫佐剂时对核酸疫苗pD-HSP90C活性的影响 | 第37-46页 |
| 3.3.1 Western Blot分析小鼠抗血清中抗体的特异性 | 第38-40页 |
| 3.3.2 人参皂苷Rb1、Rb2 及Rg3 对免疫小鼠抗血清中特异性抗体IgG与IgG1、IgG2b抗体滴度的影响 | 第40-44页 |
| 3.3.3 人参皂苷Rb1、Rb2 及Rg3 对免疫小鼠抗血清中细胞因子IL-2、IL-4 含量的影响 | 第44-46页 |
| 第四章 讨论 | 第46-48页 |
| 4.1 人参皂苷Rb1、Rb2 及Rg3 对Th细胞免疫应答的影响 | 第46-47页 |
| 4.1.1 人参皂苷Rb1、Rg3 促进了Th1 型免疫应答 | 第46-47页 |
| 4.1.2 人参皂苷Rb1、Rg3 促进了Th2 型免疫应答 | 第47页 |
| 4.1.3 人参皂苷Rb2 未见明显的免疫增强作用 | 第47页 |
| 4.2 人参皂苷Rb1、Rb2 及Rg3 佐剂活性与其结构的关系 | 第47-48页 |
| 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
